HomeРазноеНематода золотистая: Нематода картофельная золотистая | справочник Пестициды.ru

Нематода золотистая: Нематода картофельная золотистая | справочник Пестициды.ru

Содержание

Нематода картофельная золотистая | справочник Пестициды.ru

Сводные данные

Благоприятная t (оC) + 15 – + 20
Мин. t развития (оC) +12
Плодовитость (шт) 200 – 1000
Генераций в год 1 – 2
Яйцо (мм) 93 – 115 х 42 – 50
Личинка (мм) Длина 366 – 570 мкм Ширина 18 – 26 мкм
Самка (мм) Длина 380 – 1070 мкм Ширина 275 – 965 мкм
Самец (мм) Длина 890 – 1270 мкмШирина – 31 – 46 мкм
Порог вредоносности 1 – 2 яйца на грамм почвы

Морфология

Имаго. Круглые черви, как все гетеродериды, отличаются резким половым диморфизмом.

Половой диморфизм.

Самка. Длина – от 380 до 1070 мкм, ширина – от 275 до 965 мкм. Отношение длины к ширине – 0,9:1,61. Длина стилета – 24–26 мкм. Длина шеи вульвы – 10 мкм. Расстояние от вульвы до ануса – 41 мкм.

Цвет самок жемчужно-белый, форма варьирует от полусферической до овальной. Шея удлиненная, торчащая. По мере развития цвет изменяется от белого до желтого и становится золотистым при переходе от стадии самки к стадии цисты.

Кутикула толстая, с неглубокими морщинами на поверхности. У молодых самок наружный слой кутикулы состоит из правильных кольцевых рядов точек, наиболее четко выраженных в анально-вульварной области. Самые крупные размеры они имеют вблизи вульвы.

Губная область слегка отделена от тела и имеет два кольца. Губная структура развита слабо.

Стилет довольно сильный. Форма варьирует от прямого до слегка изогнутого. Головки округлые, хорошо развиты.

Пищеводные железы часто скрыты, но внешне выглядят сгруппированными.

Выделительная пора заметна хорошо и всегда находится у основания шеи.

Вульва терминальная. Анально-вульварная пластинка циркумфенестрального типа.

Анальная фенестра отсутствует. Анус и вульва расположены в вульварной базине анально-вульварной области, не окруженной кутикулярными кольцами. Часто позади вульвы обнаруживаются сгруппированные вульварные тела различного размера и формы и большой поверхностный туберкул, собранные в группу около вульварной фенестры. Вульва эллипсоидная, анус короче вульвы. Все яйца сохраняются в теле цисты. Яйцевой мешок отсутствует.[3]

Самец. Длина – 890–1270 мкм. Ширина – 31–46 мкм. Длина стилета – 25–28 мкм. Спикулы – 32–39 мкм. Губернакулум – 10–14 мкм. Хвост – 1,7–6,7 мкм. Кольца головы тонкие, их число варьирует от 5–6 до 8–9. Головная капсула развита хорошо. Стилет с массивными головками основания. Спикулы немного изогнуты, концы заостренные, зубчиков нет. До выделительной поры – 172,3 мкм, хвост – 5,4 мкм. Анальный диаметр тела – 13,5 мкм.

Тело червеобразной формы, слегка сужено с обоих концов. Кутикула имеет ясную кольчатость. Губная область немного отделена от тела, полусферической формы, с шестью кольцами. Губная структура сильно склеротизирована.

Стилет сильный, головки хорошо различимы.

Передние и задние цефалиды имеются. Боковое поле с четырьмя одинаково разделенными линиями. Средний клапан метакорпального бульбуса эллипсоидной формы. Выделительная пора находится на два кольца кутикулы позади хорошо видимого гемизонида. Половая трубка одна. Спикулы слегка дугообразные, с округлыми кончиками, незубчатые. Хвост короткий, по длине и форме различается у разных образцов.

[3]

Яйцо. Размер – 93–115 х 42–50 мкм. Отношение длины к ширине – 2,0:2,6.[3]

Циста. Длина, не включая шею, – 450–990 мкм. Ширина – 250–810 мкм. Отношение длины к ширине – 0,9:1,8, диаметр фенестры – 8–20 мкм. Расстояние от края фенестры до ануса 29–116 мкм.

Цвет коричневый. Форма от овальной до сферической. Шея выступающая. Анально-вульварная пластинка циркумфенестрального типа, булле отсутствуют, вульварные тела отсутствуют.

Вульварная фенестра гораздо больше, чем анус. Последний находится в основании V-образной метки (складки кутикулы). Рисунок оболочки цисты такой же, как и у самок, но более отчетливый, особенно в середине тела. Субкристаллический слой отсутствует. Точечность имеется, но она неравномерна по интенсивности и расположению. Циста содержит от 200 до 1000 яиц.[3]

Личинка инвазионная второго возраста. Длина – 366–570 мкм, ширина – 18–26 мкм. До экскреторной поры – 75,6–91 мкм, до клапана среднего бульбуса – 55–76 мкм. Стилет – 19,5–20,8.

Анальный диаметр тела – 10,4–11,7 мкм. Гиалиновый кончик хвоста личинки равен длине стилета – 19,5–27 мкм. Длина хвоста – 37–57 мкм.

Тело сужается с обеих сторон, но на заднем конце сильнее. Кольца кутикулы хорошо заметны. Боковое поле с четырьмя линями, наблюдающимися на большей части длины тела. Внешние две линии зазубренные, но без ареоляции.

Губная область слегка отделена от тела, имеет 4–6 колец. В основании губная область значительно шире, чем на переднем конце. По форме округлая, приплюснутая спереди.

Губная структура сильно склеротизирована. Стилет развит хорошо, с явными округлыми головками. Передние и задние цефалиды имеются.

Клапан среднего бульбуса эллипсоидной формы, виден хорошо. Истмус и пищевод имеют строение, типичное для рода Globodera.

Выделительная пора почти на одном уровне, но слегка позади гемизоида. Половой зачаток расположен слегка позади середины тела и состоит из 3–4 клеток: одна гемитативная и две-три соматические.

Хвост сужается к маленькому, округлому кончику. Фазмиды рассмотреть трудно, но часто они обнаруживаются в середине хвоста.[3]

Фенология развития (в сутках)

Превращение Полное
Полный цикл 38 – 48

Развитие

Имаго. Жизнедеятельность половозрелых особей проходит внутрикорневой системы растений. Оптимальная температура развития 15–20 °C.[2]

Самка вырастает, становится полусферической или овальной, накапливает яйца внутри тела и постепенно превращается в цисту.

[3]

Самец не питается. В течение 10 дней находит самку, оплодотворяет ее и отмирает.[3]

Период спаривания. Яйца остаются внутри самки. Одна самка производит от 200 до 1000 яиц.[3]

Яйцо зимует в цисте.[3]

Циста – отмершая самка с яйцами внутри. Легко отделяется от корней растения-хозяина и зимует в почве.[3]

Личинка. Первая личиночная фаза проходит внутри яйца. Весной при температуре выше +12°C личинки, стимулируемые корневыми выделениями растений-хозяев, выходят из цист и заражают растения в течение всего вегетационного периода. Отродившись, личинки с помощью стилета проникают в корни и молодые клубни и превращаются здесь в половозрелых самок и самцов.[2] Развитие золотистой картофельной нематоды аналогично превращению прочих родов из семейства разнокожих нематод (Heteroderidae

).[3]

Имаго. Самцы оплодотворяют самок и отмирают. Самки вырастают и прорывают наружный слой корневой коры и остаются прикрепленными к корешкам.[2]

Особенности развития. Одно поколение при оптимальных условиях развивается в течение 38–48 суток. В полевых условиях обычно развивается только одно поколение вредителя, в оптимальных – два. Активному размножению и развитию нематоды способствует влажная погода с обильными осадками.[2]

Географическое распространение

Золотистая картофельная нематода распространена практически по всей Европе. В ареал распространения входят Албания, Австрия, Болгария, Бельгия, Чехия, Хорватия, Кипр, Эстония, Дания, Франция, Финляндия, Германия, Греция, Исландия, Венгрия, Ирландия, Латвия, Литва, Люксембург, Нидерланды, Польша, Португалия, Россия (Смоленская, Брянская, Новгородская. Калининградская, Псковская, Московская, Калужская, Орловская области, Республика Татарстан и др).

Кроме того, вредитель распространен в Сербии, Словакии, Словении, Швеции, Англии, на Украине, в Африке, Алжире, а также в сибирских регионах России и Ливане.[3]

Вредоносность

Золотистая картофельная нематода – опасный вредитель картофеля и объект внутреннего карантина в России. Угнетение пораженных растений начинается сразу после появления всходов. Листьев и стеблей образуется мало, а образовавшиеся желтеют и увядают. Жизнедеятельность личинок внутри корней приводит к нарушению поступления питательных веществ и воды в растения. Из-за этого клубни образуются мелкие, недоразвитые. В богатой, плодородной почве картофель поражается гораздо меньше.

Нематода поражает также томаты, баклажаны и сорняки из семейства пасленовых.[2]

Порог вредоносности находится в диапазоне 1–2 яйца на грамм почвы.[3]

Золотистая картофельная нематода

Среди вредителей и болезней, поражающих картофель, нематодные болезни занимают одно из первых мест. Золотистая картофельная нематода (ЗКН) входит в перечень вредителей, болезней растений и сорняков, имеющих карантинное значение для Российской Федерации. В Калининградской области установлен один очаг золотистой картофельной нематоды на территории МО «Мамоновский ГО» общей площадью 107,6892 га.
Золотистая картофельная нематода относится к круглым червям и является возбудителем опасного карантинного заболевания картофеля и томатов — глободероза. Цикл развития картофельной нематоды происходит в корнях растения-хозяина. Сохраняется нематода в почве в стадии цисты. Цисты могут распространяться с частицами зараженной почвы приставшей к клубням картофеля, корнеплодам, луковицам с различным укорененным посадочным материалом, а также с почвообрабатывающими орудиями, дождевыми водами и ветром. Зараженные растения отстают в росте, листья приобретают бледную окраску и со временем усыхают, урожай резко снижается. Золотистая картофельная нематода развивается и отличается особой вредоносностью преимущественно в частном секторе, где из года в год картофель возделывается на одном и том же месте. Потери урожая при сильном заражении почвы могут составить 70-90%.
Пораженные нематодой растения определить несложно, они имеют всего 1-3 стебля, образуют или мелкие клубни, или совсем не образуют. Стебли начинают преждевременно желтеть, начиная с нижних листьев. При сильном поражении, растения, чтобы получить питательные вещества и воду, образуют мелкие корни, так называемую «бородатость» корневой системы. Начиная с фазы массового цветения и до уборки урожая на корнях невооруженным глазом можно заметить мелких, с размером макового зерна, округлых самок. Они могут быть белого, желтого или золотистого цвета, а превращаясь в цисты (отмершие самки с жизнеспособным содержимым внутри – яйцами и личинками), становятся коричневыми или темно-бурыми. Осенью цисты отделяются от корней в почву, где и зимуют. Каждая циста содержит в среднем от 100 до 500 яиц и личинок. Оставшиеся               в цистах личинки могут сохраняться живыми длительное время — до 10 лет и более.
Очень важно вовремя обнаружить картофельную нематоду и не допустить ее дальнейшего распространения. Необходимо соблюдать севооборот — картофель должен возвращаться в прежнее место не ранее, чем через 4 года. В этих промежутках можно возделывать непоражаемые нематодой культуры (многолетние травы, зерновые злаки, горох, капусту, чеснок, лук, огурцы, свеклу, кабачки). Своевременная локализация и ликвидация опасного карантинного вредителя предотвратит его массовое распространение и гибель урожая картофеля. Необходимо проводить систематическое обследование посадок картофеля с отбором почвенных проб для лабораторной экспертизы. escortnavi.com
При подозрении на выявление золотистой картофельной нематоды просим незамедлительно сообщать об этом в Управление Россельхознадзора по Калининградской области.

Нематода золотистая — вредитель картофеля: борьба и профилактикактики

Нематода золотистая — незаметный, но опасный вредитель картофеля. Борьба и профилактика заражения картофельной золотистой нематодой

Владимир Равилов   ⏳ 05-13-2016   07-12-2021

Куст картофеля поражен золотистой нематодой. Фото: gardener.wikia.comКуст картофеля поражен золотистой нематодой. Фото: gardener.wikia.com

Нематода золотистая невидима без микроскопа, поэтому плохой урожай картофеля часто списывается на плохую почву, вырождение сорта и погодные условия. Редкий огородник знает про картофельную нематоду, но мы постараемся восполнить этот пробел.

Золотистая картофельная нематода — микроскопический червь, самый опасный, карантинный, вредитель картофеля. Картофельная нематода живет в теле растений: на корнях, в стеблях.

Черви золотистой нематоды. Фото: www.invasive.org

Нематода поражает все растения семейства паслёновых: картофель, томаты, перец, белену, черный паслен и другие. На растениях других семейств нематода на живет и не размножается, специализируясь на паслёновых.

Когда на картофельном поле объявляется картофельная нематода, агрономы объявляют карантин. Скорость распространения не оставляет других сценариев развития событий — только карантин и уничтожение больных растений. Только огонь может усмирить разбушевавшегося вредителя. Хуже всего то, что нематода если не съест, то испортит, делая картофель уязвимым к болезням.

Нематода коварна — первые годы после заселения на картофельном поле обнаружить ее трудно. Начальную стадию заражения картофеля нематодой пропускают 99% огородников.

Если вы не применяете севооборот, сажая картошку на одном месте, то вам надо проверить свои растения на предмет заражения нематодой. Особое внимание надо обратить на вялые, угнетенные, кусты картофеля — вполне возможно их точит нематода (см. заглавное фото).

Нематода золотистая: симптомы заражения

Симптомы заражения нематодой таковы. У кустов, зараженных нематодой, быстро отмирают и опадают нижние листья, а остальные листья желтеют. Картофель не цветет либо цветение скудное, формирование клубней заторможено, клубни мелкие либо их нет.

Кусты, пораженные нематодой, погибают задолго до прихода осени. По этим, больным, кустам можно сделать первые выводы о надвигающейся беде. В первые годы заражения участка, пораженные кусты появляются в виде проплешин. По мере заражения территории пятна сливаются и, вуаля, весь участок успешно заражен нематодой.

Дальнейшее выращивание картошки на зараженном участке оставляет хозяина без урожая — при сильно заражении нематодой потери свыше 50%.

Как обнаружить нематоду?

Обнаружить картофельную нематоду можно с середины июля на корнях картофеля.

С виду это микроскопические черви, величиной с маковое зернышко, слабо видимые без увеличительного стекла. Самка шаровидной формы нематоды, а самец имеет червеобразную форму.

К осени самки превращаются в цисты (оболочки), величиной с маковое зернышко золотисто-коричневого цвета, в которых при неблагоприятных условиях яйца и личинки могут сохраняться длительное время.

Циста золотистой нематоды крупным планом. Фото: www.invasive.org

Весной личинки нематоды, передвигаясь в почве, находят корни картофеля, проникают в них и здесь проходят развитие до взрослой стадии, питаясь соком растений и вызывая их деформацию. Причем из цист личинки выходят не все одновременно, а их постепенное отрождение происходит в течение 3–6 лет.

Причины заражения нематодой

Заражение картофельной нематодой происходит путем механического переноса:

  • при посадке в землю заведомо зараженных клубней;
  • при хранении зараженных клубней рядом со здоровыми клубнями при повышенной влажности;
  • при использовании необработанного инструмента, который контактировал с зараженной почвой.
  • заражение путем посадки в почву, где ранее выращивался зараженный картофель.

Первые признаки поражения нематодой появляются через 40–50 дней после посадки. Пораженные растения имеют слабо развитую корневую систему, образуют мелкие клубни, имею мало стеблей.

Зараженные растения отстают в росте, у них желтеют верхние листья, а нижние — совсем увядают. При повышении температуры и снижении влажности воздуха и почвы растения засыхают и погибают, так и не дав урожая.

Цисты золотистой нематоды на корнях картошки. Фото: www.invasive.org

Если летом после цветения на зараженном участке извлечь растение из почвы и аккуратно отряхнуть почву, то на корнях можно увидеть мелких округлых самок нематод, которые в это время имеют молочно-белый цвет.

Профилактика заражения

Главная причина распространения картофельной нематоды — неправильное чередование культур на участке, а скорее всего его полное отсутствие. Нематода есть практически на каждом огородном участке и в каждой любительской теплице, где из года в год сажают одни и те же культуры.

Если на участке нет севооборота, почва истощена, а растения развиваются медленно, то самое время посадить на грядках бархатцы. Нематоды не могут питаться их корнями и гибнут. В этих же целях очень полезно вокруг картофельного поля сажать бобы, календулу и донник ароматный.

Замечено, после посевов озимой ржи участки зараженные нематодой очищаются от нематоды. Рожь неблагоприятно воздействует на нематоду при помощи корневых выделений.

Меры профилактики:

  • Севооборот, с возвращением посадок картофеля, помидоров и других пасленовых культур на тот же участок не ранее чем через 3–4 года. В таких севооборотах лучшими культурами, очищающими почву, являются бобовые культуры (особенно люпин кормовой), многолетние злаковые травы, кукуруза и только уже потом картофель нематодоустойчивых сортов.
  • Осенняя перекопка почвы строго обязательна.
  • Органические удобрения. Применение органических удобрений значительно снижает количество цист в почве. В удобренной и мульчированной почве гибель цист происходит от патогенных для нематоды грибов и хищных членистоногих.
  • Обман вредителя. Есть растения, корневые выделения которых способны провоцировать выход личинок из цист в отсутствие «хозяина». Наиболее эффективно действуют растения из семейства капустных и астровых. Можно назвать такие растения, как тагетес, пижма обыкновенная, горчица белая и другие.
  • Свежие семена. Приобретайте семенной материал картофеля только в хозяйствах, гарантирующих его чистоту от картофельной нематоды.
  • Избавьтесь от больного картофеля. Использовать урожай картофеля с зараженных нематодой участков можно только на продовольственные цели и на корм скоту. С зараженного нематодой участка нельзя переносить на другие участки инвентарь, клубни картофеля, верхний слой почвы.
  • Мойте клубни. При посадке картофеля неизвестного происхождения перед посадкой необходимо обязательно промыть клубни в теплой воде.
  • Устойчивые сорта. Выращивать необходимо относительно устойчивые к нематоде сорта картофеля — Альвара, Агрия, Аноста, Аспия, Витал, Десница, Диамант, Каратоп, Жуковский ранний, Кардинал, Кристалл, Ладожский, Латона, Лига, Лукьяновский, Пикассо, Пригожий-2, Приор, Рикеса, Рябинушка, Укома, Фелокс, Фрегата, Фреско, Херта и т.д. В корнях этих сортов личинки развиваться не могут.
  • Соблюдайте карантин. Больные и растущие рядом здоровые кусты картофеля необходимо выкопать и с комом земли закопать в заранее вырытую глубокую яму в дальнем конце участка, предварительно забросав их хлорной известью. Место из-под выкопанных кустов обильно (повторяю — очень обильно) засыпать мочевиной.
Рекомендуем почитать про сорта картофеля, устойчивые к золотистой нематоде.
Жизненный цикл золотистой нематоды. Фото: plpnemweb.ucdavis.edu

Источники:

  1. Уральский садовод 

есть опасность заражения золотистой картофельной нематодой

www.rsn-msk.ru/dopolnitelnye_ssylki_sprava_pod_togami/fitosanitariya_/rosselhoznadzor_est_opasnost_zarazheniya_zolotistoy_kartofelnoy_nematodoy/

Закончен дачный сезон, собран урожай, дачники и огородники получили долгожданный отдых и время позаботиться о будущем своих земельных наделов, некоторые из которых, при неправильном поведении землевладельцев, могут стать опасными очагами очень вредных и чрезвычайно трудноискоренимых вредителей, болезней и сорняков.

Карантинная служба России охраняет территорию страны от проникновения новых и распространения уже имеющихся карантинных организмов но, по понятным причинам, не может уследить за каждым садоводом и огородником, активно выращивающим на своих участках огромное многообразие растений. Так как растения в личные владения иногда приобретаются у нелегальных поставщиков, то могут служить источниками заражения садовых, огородных и даже лесных насаждений.

Выявление очага заражения при проведении карантинных фитосанитарных обследований территорий, законодательно предусматривает проведение комплекса мер, в том числе, и на территориях частных владений, направленных на ликвидацию карантинного организма. Это накладывает определенные обязательства на собственников и пользователей участка.

Рассмотрим один из карантинных вредных организмов, способных нанести ощутимый вред, в первую очередь, частным сельскохозяйственным угодьям, и какими путями может произойти заражение.

Золотистая картофельная нематода (Globodera rostochiensis (Woll.)Behrens.) – карантинный организм, относящийся к фитогельминтам, то есть растительным глистам. Этот карантинный объект ограниченно присутствует на территории Московской области и наиболее вредоносен в местах постоянного выращивания картофеля. Золотистая картофельная нематода может прекрасно существовать в любой части света, где выращивается картофель. Кроме картофеля, поражает томаты, баклажаны и другие растения семейства пасленовые.

Карантинный организм проникает в корни растений картофеля из почвы и паразитирует внутри, питаясь растительной тканью. При этом выделяемые нематодой пищеварительные ферменты оказывают токсичное действие на растение-хозяина. В результате скрытого внутри растения образа жизни и микроскопических размеров нематоды (0,5-1,2 мм) сложно определить, что растения на участке поражены глистами. Хотя первые признаки заболевания видны сразу после появления всходов картофеля. Зараженные нематодой растения картофеля чахлые, хилые, образуют немногочисленные стебли, которые преждевременно начинают желтеть, обычно с нижних листьев, в отличие от пожелтения верней части побегов, при вирусных заболеваниях картофеля. Если год выдался неблагоприятным по погодным условиям, ослабленные растения погибают.

Как же нематода попадает на участок? Все дело в ее способности образовывать цисты. Осенью, ко времени уборки картофеля оплодотворенные самки золотистой картофельной нематоды выходят из корней в почву, разбухают, и отмирая, образуют прочную золотисто-бурую оболочку, то есть цисту с жизнеспособными яйцами, размер цист до 1 мм (0,5-0,8 мм). Цисты могут не один год сохраняться в почве, никак не проявляя себя, но стоит только рядом оказаться корням растений семейства пасленовые (в том числе и сорным), как цисты пробуждаются, из яиц выходят личинки (от 50 до 600 в каждой цисте) и атакуют корни, проникая внутрь. Жизненный цикл нематоды повторяется. Особенно вредоносна золотистая картофельная нематода на территориях с бессменным выращиванием картофеля, что, часто характерно для частных приусадебных участков. Год от года накапливаясь в почве, нематоды могут вызывать потери урожая картофеля до 90%.

Занести на участок вредоносные цисты можно с очень небольшим количеством почвы: на подошвах обуви, колесах машин, лапах животных, с одолженным у соседей, загрязненным садовым инструментом, но, в первую очередь, с непроверенным посадочным материалом: клубнями, луковицами, корневищами, саженцами, рассадой не прошедшими фитосанитарный контроль. Купили у дороги понравившийся саженец без документов и вместе с ним «приобрели» карантинный вредный организм. Заражение может произойти и через продовольственный картофель, корнеплоды и луковицы, если на их кожуре находились цисты. Почистили, бросили отходы в компостную кучу и с дождевой водой цисты попали в зону выращивания картофеля.

Из вышесказанного понятно, как предупредить проникновение цист на участок, соблюдая простые карантинные меры.

А теперь несколько рекомендаций для тех, чьи участки уже расположены в пределах карантинной фитосанитарной зоны распространения нематоды.

Главной мерой снижения вредоносности золотистой картофельной нематоды является соблюдение севооборотов, то есть чередования культур. Если на приусадебном огороде смена культур все же имеет место (сначала на грядке выращивают свеклу, в следующем году здесь сеют петрушку, потом место занимает укроп), то под картофель, как правило, выделяется одна территория раз и навсегда. В результате, если нематода попала на участок, то каждый вегетационный сезон здесь ей обеспечен «и стол, и дом», поэтому численность вредителя неуклонно растет.

Карантинная служба предупреждает: категорически запрещается год от года выращивать картофель на одном и том же участке. На одну и ту же посадочную площадь картофель должен возвращаться не ранее, чем через пять лет.

С точки зрения борьбы с нематодой, лучшими культурами являются растения семейства крестоцветные. Это все виды капусты, редьки, а также редис, репа, горчица. Существует даже такой народный способ борьбы с нематодой: посев на зараженном участке горчицы и последующее заделывание цветущих растений в почву перекопкой. Корневые выделения и присутствующие в надземной части растений специфические вещества крестоцветных очень не нравятся фитогельминтам, резко уменьшая их количество в почве. Хорошими предшественниками в севообороте для всех овощей являются многолетние травы. И конечно, не следует высаживать в числе предшественников и последователей картофеля другие пасленовые — томаты, перцы, баклажаны и физалис.

К сожалению, полностью уничтожить золотистую цистообразующую картофельную нематоду можно только внесением в почву сильных ядохимикатов (не случайно объект отнесен к карантинным организмам), что не только небезопасно и нецелесообразно, но и запрещено для личных подсобных хозяйств. Однако свести вред от присутствия нематоды на участке к минимуму, и снизить потери урожая картофеля возможно при соблюдении вышеперечисленных рекомендаций.

Мы рассказали только об одном карантинном организме. Следите за нашими публикациями.

Золотистая картофельная нематода — Вредители — Справочники

Систематическое положение.

Тип Nemathelminthes, класс Nematoda, подкласс Secernentea, отряд Tylenchida, семейство Heteroderidae, род Globodera.

Биологическая группа.

Вредители картофеля.

Морфология и биология.

Круглые черви микроскопических размеров. Яйца почковидные (100 х 45 микрон в среднем). Личинки 1 и 2 возрастов (450 х 23 микрон) червеобразные, свернуты в яйце. Личинки 3 и 4 возрастов бутылковидные в результате утолщения средней части тела. Самки шаровидные с червеобразным головным концом (0.38-1.07 х 0.27-0.96 мм), самцы червеобразные, длина тела до 1.2 мм. Нематоды паразитируют в корнях. При их массовом заселении задерживается рост и развитие растений. Угнетенные «пальмообразные» кусты картофеля расположены на полях очагами — «плешинами». Такие растения образуют лишь несколько мелких клубней, а корни их размочалены. В конце вегетации на них обнаруживаются золотистые «крупинки». Это — цисты нематоды, которые осенью отпадают в почву. В них находятся до нескольких сот яиц и личинок 2 возраста (инвазионные). Весной при температуре почвы около 6°С и при стимуляции выделениями корней растений-хозяев личинки в массе выходят из цист в почву, находят и инвазируют их. Передвигаться они могут лишь во влажной почве на расстояние до 30 см. В корнях они становятся неподвижными, питаются, линяют и развиваются в личинок 3 и 4 возрастов, а последние — в белых самок или прозрачных самцов. Последние через разрыв коры корня выходят в почву, находят и оплодотворяют торчащих в разрыве самок и погибают. Самки продуцируют яйца, которые остаются внутри их тела. В них развиваются личинки 1, а затем 2 возраста. К концу вегетации растений самки превращаются в цисты: внутренние органы отмирают, внешние покровы затвердевают, цвет становится золотистым, а затем — коричневым.

Распространение.

Очагами во всех регионах возделывания картофеля. Большие и сильно зараженные площади имеются в Нечерноземном и Центральном районах европейской части России, в Белоруссии, Украине и Балтии, а также в Армении. Подавляющее большинство очагов выявились на приусадебных участках из-за монокультуры картофеля. Они являются источниками распространения цист на поля. Последнее время характерны ежегодное нарастание количества очагов, их перманентность и нарастание численности из-за отсутствия борьбы с нематодой.

Экология.

Вид экологически пластичный, что обусловлено способностью инвазионных личинок находиться в анабиозе в цистах до 10 лет при отсутствии растений-хозяев (картофель, томат, баклажан), сухости почвы и неблагоприятных температурах. Поэтому нематода распространена как в северных (Мурманская обл.), так и в южных (Ставропольский край) регионах. Везде развивается одно поколение в году. Наиболее благоприятны для жизни зоны с умеренным климатом и поля с легкими почвами. Такие факторы, как пористость почвы и наличие влаги в ней, важны в период передвижения личинок к корням. Дальнейшее влияние комплекса условий на паразитирующих в них нематод осуществляется через растение. Наиболее важным является обеспеченность червей пищей, а это обусловлено разными факторами: сортом картофеля, состоянием растений, степенью заселения корней нематодами. Совокупность этих факторов обусловливает уровень саморегуляции плотности популяции через снижение плодовитости самок и развития личинок в самцов.

Хозяйственное значение.

Обусловлено двумя причинами: принадлежностью вида к объектам карантина и особенностью распространения, т.к. сильно зараженные земли находятся в основном в индивидуальном секторе производства картофеля. Имеется два аспекта экономического значения нематоды: убытки, обусловленные необходимостью соблюдения карантинных ограничений при реализации картофеля, особенно семенного, и потери урожая, вызванные собственно питанием нематоды на картофеле. Последние составляют 2% при зараженности почвы 100-160 личинок на 100 куб. см, 70% — при 2000-3000 личинок на 100 куб. см. Защитные мероприятия нацелены на снижение популяции до хозяйственно низкой численности. Для этого используют устойчивые сорта картофеля и севообороты с непоражаемыми культурами.

© Гуськова Л.А.

Россельхознадзор о золотистой картофельной нематоде в Златоустовском городском округе

Специалисты Россельхознадзора провели карантинные исследования на территории Златоустовского городского округа и подтвердили наличие опасного карантинного вредителя — золотистой картофельной нематоды.

Еще в 2009 году Постановлением Губернатора Челябинской области от 29.09.2009г. № 249 «О наложении карантина по золотистой картофельной нематоде» на территории Златоустовского городского округа наложен карантин на площади 2,61 га и установлена карантинная фитосанитарная зона на площади 140 га.

На основании Приказа Управление Россельхознадзора по Челябинской области

№ 138 от 29.04.2013 г. «О проведении карантинных фитосанитарных обследований» специалистами Управления Россельхознадзора по Челябинской области проведен государственный карантинный фитосанитарный контроль на приусадебных участках

г. Златоуста с отбором образцов почвы для проведения лабораторного анализа на наличие золотистой картофельной нематоды с площади 0,5 га.

Проведенная в Референтном центре ФГБУ «ЧМВЛ» фитосанитарная экспертиза подтвердила наличие этого карантинного заболевания. В результате проведенного лабораторного анализа выявлены цисты золотистой картофельной нематоды с живыми личинками.

Владельцам приусадебных участков рекомендовано выполнять карантинные правила и мероприятия в целях профилактики заражения почвы карантинным заболеванием золотистой картофельной нематодой в установленной карантинной фитосанитарной зоне.

Россельхознадзор напоминает, что золотистая картофельная нематода — узкоспециализированный вид нематод, который паразитирует на корнях картофеля и томатов, поражает другие растениях из семейства паслёновых. Развитие картофельной нематоды происходит в корнях растения-хозяина. Больные растения образуют слабые стебли, которые преждевременно желтеют. Клубней образуется мало, они мелкие, а иногда совсем отсутствуют. Картофельная нематода особенно значительный ущерб наносит на приусадебных участках и на полях с сокращенным севооборотом, где картофель выращивается бессменно или возвращается на прежнее место на второй-третий год. Потери урожая могут составлять 30-80 %. Кроме прямых потерь, есть потери, обусловленные запретом или ограничением перевозки продукции из зон заражения, поскольку картофельная нематода является объектом внешнего и внутреннего карантина.

Золотистая картофельная нематода — это… Что такое Золотистая картофельная нематода?

Золотистая картофельная нематода
Научная классификация

промежуточные ранги

Без ранга:  Nematoida
Надсемейство:  Tylenchoidea
Семейство:  Heteroderidae
Подсемейство:  Heteroderinae
Вид:  Золотистая картофельная нематода
Международное научное название

Globodera rostochiensis Wollenweber, 1923

Золотистая картофельная нематода (лат. Globodera rostochiensis) — узкоспециализированный вид нематод, который паразитирует на корнях картофеля и томатов, поражает другие растениях из семейства паслёновых.

Развитие картофельной нематоды происходит в корнях растения-хозяина. Больные растения образуют слабые стебли, которые преждевременно желтеют. Клубней образуется мало, они мелкие, а иногда совсем отсутствуют.

Картофельная нематода особенно значительный ущерб наносит на приусадебных участках и на полях с сокращенным севооборотом, где картофель выращивается бессменно или возвращается на прежнее место на второй-третий год. Потери урожая могут составлять 30-80 %. Кроме прямых потерь, есть потери, обусловленные запретом или ограничением перевозки продукции из зон заражения, поскольку картофельная нематода является объектом внешнего и внутреннего карантина.

По Украине на 1.01.2006 года площадь под золотистой картофельной нематодой составляет 5453,06 га.

Распространяется картофельная нематода в основном в стадии цист, которые прилипают к предметам, соприкасающихся с зараженным грунтом и переносятся на любые расстояния. Обычно цисты переносятся с посадочным материалом, с почвой, оставшейся на клубнях, корнеплодах, луковицах, дождевыми водами и ветром.

Происходит из Анд Южной Америки[1]. Впервые в Европе найдена в 1913 году в Германии вместе с импортированным картофелем. Также найдена в Африке, Азии и Австралии. В США впервые обнаружена в 1941 году, в Канаде в 1960-х годах, в Мексике в 1970-х[2].

Примечания

Ссылки

Литература

Картофельная цистовая нематода | CropWatch

Цисты на корне картофеля.

Виды Globodera имеют несколько патогенных типов и встречаются в большей части мира. Они были выявлены как минимум в 58 странах. Картофельная цистовая нематода, вызывающая наибольшее беспокойство в Северной Америке, — это G. rostochiensis или золотистая цистовая нематода, для которой характерны золотые самки. В Северной Америке он находится под строгим карантином.Родственный вид, обнаруженный в 2006 году в поле в Айдахо, — это G. pallida или бледная цистовая нематода. Самки этого вида имеют белый или кремовый окрас.

Жизненный цикл:

Яйца G. rostochiensis вылупляются за счет стимулятора, выделяемого корнями картофеля в почву. Сначала молодые особи развиваются внутри самки. Самка постепенно меняет цвет от белого до кремово-желтого на золотой, а после смерти образуется темно-коричневая киста. Из цисты выходят молодые особи и попадают в корневую систему, которой они питаются.После прохождения трех-четырех ювенильных стадий самец оставляет корень с червеобразным видом. Самки имеют шаровидную форму; они разрастаются и прорываются сквозь корень, высовываясь наружу своим телом. Самцы спариваются с выступающей самкой. Время от яиц до взрослых особей составляет от 38 до 48 дней в зависимости от температуры, и существует одно поколение за сезон. Прирост населения между поколениями от 12 до 35 раз.

Симптомы и повреждения:

Симптомы у виноградных лоз, вызванные инфекцией, аналогичны симптомам у растений, испытывающих водный стресс.Есть хлороз, затем увядание и, наконец, преждевременная смерть. У корней картофеля есть маленькие цисты темно-коричневого цвета, в которых содержится от 200 до 500 яиц. Кисты — это тела мертвых самок, в которых сохраняются жизнеспособные яйца. Цисты могут сохраняться в почве до 20 лет. Сильные заражения могут привести к полной потере урожая картофеля. Сообщалось, что G. rostochiensis вызывает синергетические потери с Rhizoctonia solani и Verticillium dahliae.

Управление:

Основной метод борьбы с нематодой Golden Cyst — строгие правила карантина.Эта нематода подпадала под действие этих правил на Лонг-Айленде, штат Нью-Йорк, а недавно нематода была обнаружена в Квебеке и Альберте, Канада. G. rostochiensis легко распространяется через перенос зараженной почвы на семенных клубнях, оборудовании и контейнерах. Посадка инфицированных семенных клубней приведет к распространению нематоды в почву. Как только нематода укоренилась в почве, ее практически невозможно искоренить. Известна некоторая сортовая устойчивость благодаря гену, выведенному из нескольких коммерческих сортов, но эффективна только против некоторых патогенных типов G.rostochiensis и G. pallida. Диапазон хозяев золотой нематоды ограничен помидорами, баклажанами и несколькими сорняками пасленовых. Севооборот эффективен, и интервал севооборота зависит от степени заражения. Фумигация использовалась для быстрого и резкого сокращения популяций. В настоящее время в США нет нематицидов, не являющихся фумигантами. Биологический контроль не показал большого успеха. Практика управления зараженным полем требует комплексного подхода с использованием различных методов на протяжении многих лет.Лучший подход — не сажать семенные клубни с зараженного поля и не перемещать какое-либо оборудование с зараженных полей или хранилищ на чистое поле или в чистое хранилище. Соблюдайте карантинные процедуры.

Самка нематоды бледно-кистозной (G. pallida)

Самец нематоды бледно-кистозной (G. pallida)


Информация о золотых нематодах — Лечение золотых нематод в садах

Если вы никогда не читали информации о золотых нематодах, возможно, вы не знаете о золотых нематодах в садах.Золотистые нематоды — одни из самых опасных вредителей картофеля и других растений семейства пасленовых. Читайте дальше, чтобы получить дополнительную информацию о золотых нематодах, включая методы борьбы с золотыми нематодами.

Что такое золотая нематода?

Их можно назвать «золотыми», но это не значит, что они подходят для вашего сада. Что такое золотая нематода? Это насекомое, которое атакует растения семейства пасленовых, включая картофель, баклажаны и томаты.

Информация о золотых нематодах поможет вам понять, как эти вредители повреждают ваши садовые растения.Ущерб наносится, когда золотая нематода находится в личиночной стадии. Личинки живут на корнях растения-хозяина или рядом с ним и проникают в корни растения, чтобы высосать их соки, ослабляя и в конечном итоге убивая растения.

Информация о золотой нематоде

Жизненный цикл золотой нематоды состоит из трех стадий: яйца, личинки и взрослой особи. Золотые нематоды в садах проходят через эти стадии жизни от пяти до семи недель.

Взрослая самка спаривается, а затем откладывает яйца на корни растения-хозяина.Самки нематод умирают, и их тела превращаются в цисты, покрывающие и защищающие яйца. Кисты крошечные, не больше булавочной головки, но каждая может содержать около 500 яиц золотых нематод.

Яйца остаются в почве в состоянии покоя до 30 лет, пока растения-хозяева не высвободят химическое вещество, которое стимулирует превращение яиц в личинок. Вылупившиеся личинки попадают в корни и начинают питаться. Поскольку корни являются первой зараженной частью растения, вы можете ничего не заметить сразу. Со временем вы увидите, что ваши растения не разрастаются.При сильном заражении листва растения желтеет, увядает и отмирает.

Лечение золотых нематод

Бороться с золотыми нематодами сложно. Золотые нематоды в садах обычно появляются, когда почва, содержащая цисты, попадает на ваш задний двор. Это может произойти через зараженный семенной картофель, цветочные луковицы или садовый инвентарь.

Если вы живете в районе, зараженном нематодами, вероятно, существуют правила, требующие от полевых рабочих чистить и дезинфицировать оборудование.Ваш лучший шаг к борьбе с золотыми нематодами — высаживать устойчивые к нематодам сорта растений и чередовать их с другими культурами, не являющимися хозяевами, такими как кукуруза, соя или пшеница.

В районах страны, где ведется борьба с нематодами, производители, желающие сажать картофель, могут быть обязаны следовать плану севооборота, разработанному учеными для уменьшения распространения цист, и контролируется инспекторами для обеспечения соблюдения.

Как насчет лечения золотых нематод химическими препаратами? Доступны химические вещества, используемые для борьбы с нематодами — так называемые нематоциды.Если вы лечите золотистых нематод в особых случаях, их использование может помочь.

Золотая нематода — Globodera rostochiensis

Золотая нематода

Научный Название: Globodera rostochiensis
Общее название: золотая нематода, золотая картофельная нематода, желтая картофельная нематода

Известные хосты:
Картофель ( Solanum spp.), помидоры ( Lycopersicum esculentum ), баклажаны ( S. melogena ) и некоторые пасленовые сорняки (например, паслен).

Подобные заболевания или симптомы:
Легкое заражение можно принять за недостаток воды или минералов. Лабораторный анализ необходим для определения присутствия нематод.
Бледная цистовая нематода ( Globodera pallida ) очень похожа на золотую нематоду, за исключением того, что она не проходит через золотисто-желтую фазу, когда киста темнеет.(Рисунок 6)

Информационные бюллетени и ссылки:
Совместное обследование сельскохозяйственных вредителей, веб-страница Golden Nematode
http://pest.ceris.purdue.edu/pest.php?code=NEFBBBA

Веб-страница золотых нематод USDA / APHIS
http://www.aphis.usda.gov/plant_health/plant_pest_info/nematode/index.shtml

Таблицы данных ЕОКЗР по карантинным вредным организмам
http: // www.eppo.org/QUARANTINE/nematodes/Globodera_pallida/HETDSP_ds.pdf

Министерство сельского хозяйства, продовольствия и рыболовства: Правительство Британской Колумбии
http://www.agf.gov.bc.ca/cropprot/goldennema.htm

Канадское агентство по надзору за пищевыми продуктами
http://www.inspection.gc.ca/plants/plant-protection/nematodes-other/potato-cyst-nematodes/fact-sheet/eng/1337002354425/1337002587229

Броди, Б.B. 1996. Золотая нематода: история успеха биологической борьбы.
http://www.nysaes.cornell.edu/ent/bcconf/talks/brodie.html

Информационный бюллетень о золотых нематодах Мичиганского государственного университета
http://www.ipm.msu.edu/uploads/files/Forecasting_invasion_risks/goldenNematode.pdf

Rich, A.E.1983. Болезни картофеля. Academic Press, Нью-Йорк, Нью-Йорк.

Hooker, W.J., ed. 1981. Картофельные нематоды Cyst, стр.94-96 в Сборнике болезней картофеля. Американское фитопатологическое общество, Сент-Пол, Миннесота, США.

Последний раз отзыв 30 декабря 2014 г.

Жизненный цикл нематоды Golden Cyst, Globodera rostochiensis, в Квебеке, Канада

J Nematol. 2015 Dec; 47 (4): 290–295.

Agriculture and Agri-Food Canada, Сен-Жан-сюр-Ришелье, Квебек J3B 3E6, Канада.

Мы благодарим Ивона Фурнье и Каталин Себук за их техническую помощь, а также благодарим Джорджа Лапланте за его опыт и руководство на протяжении всего проекта по созданию золотых нематод.

Эта работа была поддержана программой DIAP Министерства сельского хозяйства и агропродовольствия Канады, программой RPS Канадского агентства по надзору за пищевыми продуктами (CFIA) и Центром исследований Les Buissons.

Эту статью отредактировала Инга Засада.

Copyright © Общество нематологов, 2015Эта статья цитируется в других статьях в PMC.

Abstract

В 2006 году золотая цистовая нематода, Globodera rostochiensis , была обнаружена в провинции Квебек, Канада.Мы сообщаем здесь о жизненном цикле G. rostochiensis в климатических условиях юго-западного Квебека. В этих широтах за год создавалось только одно полное поколение. По сорту восприимчивого картофеля. Snowden, G. rostochiensis требовалось как минимум 579 единиц степени роста (GDU) (базовая 5,9 ° C) для завершения жизненного цикла, и первые зрелые цисты наблюдались через 42–63 дня после посадки (DAP). В почве молодые особи второй стадии (J2) сначала наблюдались с 14 по 21 DAP, тогда как белые самки на корнях и самцы в почве появлялись синхронно через 35-42 дня.На продолжительность жизненного цикла влияла температура, но не тип почвы. Вторая волна отрождения систематически происходила позже в течение сезона, а второе поколение самцов наблюдалось в течение вегетационного периода 2011 года. Перед старением растений полного второго цикла не наблюдалось. Изменение климата и созревание более поздних сортов / культур могут позволить в будущем вырастить полноценное второе поколение.

Ключевые слова: нематоды картофельных цист, Globodera , жизненный цикл, Канада

Картофель является основной отраслью в Канаде: в 2012 году было засеяно более 150 000 га земли, что на сумму более 1 миллиарда долларов (Статистическое управление Канады, 2013).Картофельные цистные нематоды (PCN), Globodera rostochiensis (Woll.) И G. pallida (Stone) являются наиболее серьезными нематодами, угрожающими выращиванию картофеля во всем мире (Turner and Evans, 1998). Эти нематоды обладают замечательной способностью выживать в течение многих десятилетий в отсутствие подходящего хозяина и способны вызывать большие потери урожая (Baldwin and Mundo-Ocampo, 1991; Brodie et al., 1998). Таким образом, они являются предметом строгих карантинных правил во многих странах, включая Канаду и США.До недавнего времени присутствие PCN в Канаде ограничивалось островом Ванкувер и провинцией Ньюфаундленд и Лабрадор (Olsen and Mulvey, 1962; Orchard, 1965; Stone et al., 1977). В 2006 г. около города Сен-Амабль в провинции Квебек было обнаружено G. rostochiensis (Sun et al., 2007; Mahran et al., 2010). Это открытие привело к тому, что Канадское агентство по надзору за качеством пищевых продуктов ввело карантинный статус на 4750 га земли (CFIA, 2006).

Жизненный цикл PCN подробно описывался за последнее столетие во многих регионах земного шара (Philis, 1980; Greco et al., 1988; Renčo, 2007; Бачич и др., 2011; Ebrahimi et al., 2014). В умеренных условиях обычно происходит одно поколение в течение вегетационного периода. Управление PCN обычно подразумевает сочетание нескольких интегрированных подходов. Химическая обработка существует, но этот вариант является дорогостоящим и нежелательным с экологической точки зрения (Evans et al., 2002). Севооборот с растениями, не являющимися растениями, может быть эффективным в предотвращении размножения ПХН, но не может использоваться сам по себе для быстрого снижения вредного порога или уровней обнаружения (Brodie, 1996).Действительно, PCN разработала стратегию, которая ограничивает вывод в отсутствие хозяина, позволяя яйцам сохраняться в почве в течение десятилетий в отсутствие картофеля (Evans and Stone, 1977). Также использовалось несколько альтернативных подходов, но для достижения успеха требуется тщательный мониторинг поведения PCN в данном регионе мира. Например, как ранний сбор урожая (Webley and Jones, 1981; Ebrahimi et al., 2014), так и выращивание ловушек (Scholte and Vos, 2000) используют восприимчивых хозяев, которые собираются или уничтожаются до завершения жизненного цикла нематод; это позволяет вылупиться без образования новых кист.Таким образом, требуется хорошее знание жизненного цикла, чтобы предотвратить отказ этого метода и увеличение количества PCN. Среди всего прочего, наиболее эффективным методом борьбы с PCN является использование устойчивых сортов. Это позволяет сократить популяции с недостаточным уровнем обнаружения, пока патотип PCN в данной области чувствителен к используемому гену устойчивости (Whitehead and Turner, 1998). В этом исследовании мы представляем наблюдения за жизненным циклом популяций G. rostochiensis в полевых условиях в Квебеке, Канада.

Материалы и методы

С 2009 по 2012 г. два естественно зараженных поля с G. rostochiensis были культивированы с восприимчивым картофелем cv. Сноуден на двух карантинных экспериментальных участках, один на песчаной почве (89% песка, 6% ила и 6% глины) (Сен-Амабль; 45 ° 39′44,81 ″ с.ш., 73 ° 16′24,52 ″ O), а второй — на навозная почва (75% органического содержания) (Сен-Доминик; 45 ° 35′7,31 ″ с.ш., 72 ° 54′4,08 ″ O). На каждом участке было засеяно по 16 клубней картофеля в три ряда с интервалом 30 см между растениями и рядами на восьми участках размером 1 × 2 м, окаймленных деревянными досками.Клубни были посажены 15 мая 2009 г., 12 мая 2010 г., 18 мая 2011 г. и 23 мая 2012 г. в Сен-Амабле и 14 мая 2009 г., 13 мая 2010 г., 19 мая 2011 г. и 25 мая 2012 г. в Сен-Доминик. Растения удобряли в соответствии с рекомендациями «Центра помощи в сельском хозяйстве и сельском хозяйстве Квебека» (Справочное руководство по внесению удобрений, 1-е издание, 2003 г.). Перед посадкой и каждую неделю после посадки образцы почвы собирали в 12 равномерно распределенных точках на участке на глубину 20 см с помощью ручного шпателя.После сушки 300 см 3 почвы измеряли для каждого составного образца и использовали для экстракции цист с использованием процедуры банки Фенвика (Фенвик, 1940). Для каждого образца цисты выделяли на молочном фильтре (KenAG BREAK PROOF D-547) и подсчитывали визуально под стереоскопическим микроскопом. Жизнеспособность яиц оценивали на извлеченных цистах (максимум 50 цист), помещенных в микропробирку объемом 1,5 мл, содержащую 1 мл водопроводной воды. Используя гранулированный пестик, цисты разрывали, и все содержимое помещали в счетную чашку для наблюдения под инвертированным микроскопом.Жизнеспособность яиц определялась визуально на основании внутренней морфологии как живых, так и мертвых яиц и молоди (EPPO, 2013).

Через три недели после посадки и еженедельно после этого одно растение картофеля с участка удаляли лопатой и собирали образец почвы, прилипшей к корням. Для определения количества молоди второй стадии (J2) и самцов отбирали 100 мл подвыборки почвы на делянку с помощью лотка Бермана (Townshend, 1963). Корневую систему картофеля погружали в ведро, наполненное чистой водой, для удаления приставшей почвы, а затем хранили в пластиковом пакете, содержащем влажное бумажное полотенце.Количество белых самок (незрелых) и коричневых цист (зрелых) на всей корневой системе 16 растений (по 8 растений с каждого участка) определяли с помощью линзы с увеличением × 10.

Чтобы стандартизировать подсчет нематод между участками, местоположениями и годами, все подсчеты (J2, самец и белая самка) были выражены как отношение численности путем деления каждого подсчета на начальное количество жизнеспособных яиц на данном участке. Температура почвы на глубине 15 см и количество осадков отслеживались ежечасно в обоих местах с помощью логгеров данных HOBO H8 Pro Series и HOBO Rain gauge RG3-M соответственно.Накопление единиц степени роста после посадки также было рассчитано с использованием базальной температуры 5,9 ° C, предложенной Mugniéry (1978), и представлено в.

Единицы степени роста (базовая 5,9 ° C), накопленные после посадки картофеля в A. Saint-Amable, Квебек, Канада. Б. Сен-Доминик, Квебек, Канада.

Результаты

Температура почвы и осадки:

Среднесуточные температуры почвы показаны в. В целом Сен-Амабль был на 1,0 ° C ± 0,1 ° C теплее, чем Сен-Доминик.В Сен-Амабле GDU при старении растений, 134 DAP, колеблется от 1590 (2009 г.) до 2005 (2012 г.), в среднем 1837 GDU (). В Сен-Доминик GDU варьировался от 1539 (2009 г.) до 1845 (2012 г.), в среднем 1757 GDU. В экспериментальных районах вегетационный период 2012 года был теплее, чем три других года, с более высокими температурами весной и в начале лета (). Вегетационный период 2011 г. характеризовался более высокими температурами в середине лета. Сезон роста 2009 года был самым холодным — 1590 и 1539 GDU в Сен-Амабле и Сен-Доминике, соответственно, тогда как сезон 2010 года в среднем составил 1819 и 1759 GDU в Сен-Амабле и Сен-Доминике, соответственно.

Средняя температура почвы на глубине 15 см и совокупное количество осадков от посадки для обоих полей: Сен-Амабль и Сен-Доминик, Квебек, Канада.

Таблица 1

Количество единиц степени роста с использованием основания 5,9 ° C (GDU 5,9 ), накопленных в почве (15 см) после посадки картофеля до наблюдения различных стадий развития Globodera rostochiensis в Сент-Амабле и Сен-Доминик, Квебек, Канада.

Суммарное количество осадков (в миллиметрах) в обоих местах за все четыре года также представлено в.В вегетационный период 2011 года выпало больше всего осадков: более 500 мм от посадки до старения растений, в основном, в конце сезона. В вегетационный период 2012 года выпало наименьшее количество осадков — около 350 мм на обоих участках.

Анализ жизненного цикла:

Начальная плотность популяции G. rostochiensis колебалась от 5 до 110 и от 2 до 315 жизнеспособных яиц на грамм почвы в Сен-Амабле и Сен-Доминике, соответственно (). Всходы картофеля появлялись ежегодно через неделю после посадки.

Таблица 2

Среднее количество начальных жизнеспособных яиц (диапазон) в Сен-Амабле и Сен-Доминик, Квебек, Канада.

Молодь первой второй стадии была обнаружена в почве с 14 по 28 DAP, и для ее появления требовалось минимум 122 GDU (). В годы ранней посадки картофеля (2009 и 2010 гг.) Присутствие J2 в почве задерживалось (). Второй пик J2 регистрировался ежегодно на обоих участках, обычно меньше первого пика в пропорции 1: 2 (). Однако в 2011 году было обнаружено, что второй пик J2 в Сен-Доминике в три раза больше первого, а также имеет двухрежимную форму ().

Появление Globodera rostochiensis молодь второй стадии (J2) в A. Saint-Amable, Квебек, Канада. Б. Сен-Доминик, Квебек, Канада. Каждая точка представляет собой среднее ( n = 8) отношений обилия J2, деленного на начальное количество жизнеспособных яиц на грамм почвы.

Самцы были обнаружены в почве от 35 до 42 DAP и требовали минимум 299 GDU (). Как правило, на обоих участках наблюдался один пик самцов (). Соответственно, самцов в почве было в три-шесть раз меньше, чем у J2.В 2011 году количество самцов в почве было особенно большим в Сен-Доминик, и был зарегистрирован второй пик, но меньший в соотношении 1: 6 (). В том же году была измерена задержка в 55 дней между первыми наблюдениями самцов и вторым пиком.

Встречаемость Globodera rostochiensis самцов в почве в A. Saint-Amable, Квебек, Канада. Б. Сен-Доминик, Квебек, Канада. Каждая точка представляет собой среднее ( n = 8) отношения численности самцов, деленное на начальное количество жизнеспособных яиц на грамм почвы.

Первые белые самки появились от 28 до 42 DAP и требовали минимум 299 GDU (). В 2009 году, самом холодном сезоне, белые самки задержались на 1 и 2 недели в Сен-Амабле и Сен-Доминике, соответственно, по сравнению с тремя другими годами (). В самый теплый сезон 2012 г. первые белые самки были зарегистрированы 28 DAP и 357 GDU в Сен-Доминике (). Зрелые кисты наблюдались от 42 до 63 DAP; для полной разработки требовалось минимум 579 GDU ().

Встречаемость Globodera rostochiensis белых самок на корнях картофеля у A.Сен-Амабль, Квебек, Канада. Б. Сен-Доминик, Квебек, Канада. Каждая точка представляет собой среднее ( n = 8) отношения обилия белых самок на корнях одного растения, деленное на начальное количество жизнеспособных яиц на грамм почвы.

Обсуждение

На основании этих наблюдений одно полное поколение G. rostochiensis в год было зарегистрировано в обоих местах в Квебеке. Эти наблюдения согласуются с общим мнением о том, что одно поколение возникает в течение вегетационного периода в умеренном климате (Morris, 1971; Evans and Stone, 1977; Greco et al., 1988; Бачич, 2011). Продолжительность жизненного цикла различалась от года к году и зависела от накопления тепла. Минимальное количество GDU, необходимое для завершения жизненного цикла, составило 579. Для сравнения, Ebrahimi et al. (2014) сообщили о минимуме 401 GDU и 62 DAP для одного и того же вида, но для другого сорта в Бельгии. Такое меньшее количество GDU можно объяснить использованием проросших семян, что дало фору растениям картофеля. Накопление тепла происходило быстрее в наших условиях в Квебеке, и жизненный цикл был завершен 42 DAP в самый теплый год (2012).Этот результат аналогичен наблюдениям Джонса и Паррота (1969), которые сравнили разные годы и даты посадки и обнаружили, что развитие G. rostochiensis больше зависит от скорости накопления тепла, чем от температуры, за исключением экстремальных случаев.

Мы обнаружили, что для каждой стадии развития требуется минимальная продолжительность, независимо от температуры. До наблюдения полностью зрелых кист требовалось как минимум 7 недель. Таким же образом требовалось минимум 14 дней до значительного увеличения J2 в почве после посадки.Кроме того, требуется минимум 14 дней между присутствием J2 в почве и появлением первых белых самок и минимум 28 дней между J2 в почве и первыми зрелыми цистами.

Было показано, что температура почвы оказывает значительное влияние на отрождение PCN (Робинсон и др., 1987; Качмарек и др., 2014). Оптимальный вывод G. rostochiensis произошел при температуре от 15 ° C до 27 ° C, но вылупление задерживалось при температуре выше 25 ° C (Kaczmarek et al., 2014). На основе работы Kaczmarek et al. (2014), вероятно, что повышение температуры почвы, связанное с изменением климата, увеличит отрождение G. rostochiensis в климате, подобном климату Квебека.

В 2009 году картофель был посажен рано (15 мая) из-за теплой весны, но вскоре после этого температура упала и оставалась низкой в ​​течение нескольких недель. Это отложило первое наблюдение J2 в почве до 28 DAP. Для сравнения, картофель был посажен в то же время в 2010 г. (12 мая), а J2 наблюдались только через 21 день, что аналогично годам с более поздними сроками посадки.Это также наблюдали Джонс и Парротт (1969), которые заявили, что время, необходимое для вылупления яиц и проникновения J2 в корни, было больше, если посев происходил рано, по сравнению с поздним. Напротив, промежуток времени между присутствием J2 в почве и появлением первых самок на корнях не зависел от температуры, вероятно, из-за более «умеренных» условий внутри корней. В этом исследовании выяснилось, что развитие G. rostochiensis не зависело от типа почвы.Хотя влияние типа почвы как такового на жизненный цикл не задокументировано, не сообщалось о значительном влиянии на сокращение популяции G. rostochiensis и G. pallida в различных типах почв (Turner, 1996).

Вторая волна J2 произошла в конце сезона в обоих местах в течение всех лет. Ранее описывалось, что это событие происходит где-то еще (Greco et al., 1988; Renco, 2007). В 2011 году это событие было особенно важным в Сен-Доминик.Интересно отметить, что участки, выбранные в том году, имели самую низкую плотность популяции () G. rostochiensis , а также обеспечивали более высокий коэффициент размножения по сравнению с другими годами, как и в предыдущем отчете (Jones and Parrott, 1969). При добавлении коэффициента численности J2, зарегистрированного в том году, общее количество J2, извлеченных из почвы, в 1-3 раза превышало первоначальное количество жизнеспособных яиц, зарегистрированных той весной. Таким образом, эти наблюдения подтверждают гипотезу о том, что вылупление только что отложенных яиц могло произойти до перехода в состояние покоя.Результаты, полученные Хименес-Пересом и соавт. (2009) также предполагают, что диапауза не обязательна для G. rostochiensis и что по крайней мере небольшая часть яиц первого поколения может вылупиться напрямую. Blok et al. (2011) также наблюдали вылупление новообразованных яиц вместе с неполным вторым поколением. В наших экспериментах второе появление J2 не сопровождалось второй волной цист из-за отсутствия мелких питающих корней на стареющих растениях картофеля. Однако второе появление самцов в почве было зарегистрировано в 2011 году на Сен-Доминик через 21 день после того, как наблюдалась вторая волна J2.Это указывает на то, что второе поколение G. rostochiensis могло бы быть возможным, если бы использовались более поздние сорта. Было бы интересно наблюдать за развитием G. rostochiensis на других культурах-хозяевах, таких как томаты, которые могут расти позже в сезон, в зависимости от безморозного периода. В Италии при выращивании позднеспелого картофеля сорт. Сообщалось о Majectic, втором поколении G. rostochiensis (Greco et al., 1988).

Наши результаты дают представление о важности хорошего знания срока службы G.rostochiensis , когда для управления используется культурная практика, такая как ловчие урожаи. Техника выращивания ловушек основана на запуске вылупления яиц PCN с помощью корневых экссудатов и уничтожении растений до того, как произойдет какое-либо размножение нематод. При использовании устойчивого сорта картофеля было продемонстрировано, что для уменьшения популяции ниже обнаруживаемых уровней в Квебеке необходимо 2 или 3 года отлова (неопубликованные данные). К сожалению, наличие устойчивых семян картофеля в Канаде остается очень ограниченным.Таким образом, правильное время для уничтожения восприимчивого сорта картофеля при использовании ловушки будет гораздо более важным, чтобы избежать увеличения популяций нематод. По нашим результатам, первые белые самки были зарегистрированы между 28 и 42 DAP, в основном, в зависимости от количества GDU, накопленных после посадки. В идеале ловушка должна быть уничтожена при появлении белых самок для максимальной эффективности.

Цитированная литература

Бачич Дж., Барси Л., Штрбак П. Жизненный цикл нематоды картофельной золотистой цисты ( Globodera rostochiensis ), выращиваемой в климатических условиях в Белграде.Архив биологических наук. 2011; 63: 1069–1075. [Google Scholar]

Болдуин Г.Дж., Мундо-Окампо М. 1991. Heteroderinae, нематоды, образующие и не образующие цисты. Стр. 275–362 в Р. В. Никле, изд. Руководство по сельскохозяйственной нематологии. Нью-Йорк: Марсель Деккер.

Броди ББ. Влияние исходной плотности нематод на содержание Globodera rostochiensis с устойчивыми сортами и без хозяев. Журнал нематологии. 1996. 28: 510–519. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

Brodie BB, Evans K, Franco J.1998. Нематоды-паразиты картофеля. Стр. 87–132 в К. Эванс, Д. Л. Труджилл и Дж. М. Вебстер, ред. Сажайте нематод-паразитов в сельском хозяйстве умеренного пояса. Уоллингфорд: CAB International.

Blok V, Kaczmarek A, Palomares-Rius JE. Влияние температуры на жизненный цикл Globodera spp. Коммуникации в сельскохозяйственных и прикладных биологических науках. 2011. 76: 307–310. [PubMed] [Google Scholar] Эбрахими Н., Виене Н., Демеулемейстер К., Моенс М. Наблюдения за жизненным циклом нематод картофельных цист, Globodera rostochiensis и G.pallida , на ранних сортах картофеля. Нематология. 2014; 16: 937–952. [Google Scholar]

EPPO 2013. PM 7/40 (3) Globodera rostochiensis и Globodera pallida . Бюллетень OEPP / EPPO Bulletin 43: 119–138.

Эванс К., Стоун АР. Обзор распространения и биологии нематод картофельных цист Globodera rostochiensis и G. pallida . Международный журнал борьбы с вредителями. 1977; 23: 178–189. [Google Scholar] Эванс К., Вебстер Р.М., Халфорд П.Д., Баркер А.Д., Рассел М.Д.Управление нематодами в конкретных местах — подводные камни и практические аспекты. Журнал нематологии. 2002; 34: 194–199. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] Фенвик DW. Методы извлечения и подсчета цист Heterodera schachtii из почвы. Журнал гельминтологии. 1940; 18: 155–172. [Google Scholar] Греко Н., Инсерра Р., Брандонизио А., Тирро А., Де Маринис Г. Жизненный цикл Globodera rostochiensis на картофеле в Италии. Nematologia Mediterranea. 1988. 16: 69–73. [Google Scholar] Huijsman CA.Селекция на устойчивость к угревому червю картофельного. Euphytica. 1955; 4: 133–140. [Google Scholar] Хименес-Перес Н., Кроццоли Р., Греко Н. Жизненный цикл и появление молодых особей второй стадии из цист Globodera rostochiensis в Венесуэле. Nematologia Mediterranea. 2009. 37: 155–160. [Google Scholar] Джонс Дж., Пэрротт DM. Колебания численности Heterodera rostochiensis Woll. при непрерывном выращивании восприимчивых сортов картофеля. Летопись прикладной биологии. 1969; 63: 175–181.[Google Scholar] Kaczmarek A, MacKenzie K, Kettle H, Blok VC. Влияние температуры почвы на Globodera rostochiensis и Globodera pallida . Phytopathologia Mediterranea. 2014; 53: 396–405. [Google Scholar] Махран А., Тернер С., Мартин Т., Ю. К., Миллер С., Сан Ф. Золотая картофельная нематода, цистовая нематода Globodera rostochiensis , патотип Ro1 в регулируемой зоне Сент-Амабл в Квебеке, Канада. Болезнь растений. 2010; 94: 1510. [Google Scholar] Моррис Р. Распространение и биология золотой нематоды Heterodera rostochiensis в Ньюфаундленде.Nematologica. 1971; 26: 370–376. [Google Scholar] Mugniéry D. Vitesse de development en fonction de la température de Globodera rostochiensis et G. pallida (Nematoda: Heteroderidae) Revue de Nématologie. 1978; 1: 3–12. [Google Scholar] Олсен О.А., Малви Р.Х. Открытие золотой нематоды на Ньюфаундленде. Канадское исследование болезней растений. 1962; 42: 253. [Google Scholar] Orchard WR. Появление золотой нематоды на острове Ванкувер, Британская Колумбия. Канадское исследование болезней растений.1965; 45: 89. [Google Scholar] Филис Дж. История жизни цистовой нематоды картофеля Globodera rostochiensis на Кипре. Nematologica. 1980; 26: 295–301. [Google Scholar] Ренко М. Сравнение жизненного цикла картофельной цистовой нематоды ( Globodera rostochiensis ) патотипа Ro1 на выбранных сортах картофеля. Биология. 2007; 62: 195–200. [Google Scholar] Робинсон член парламента, Аткинсон Х. Дж., Перри Р. Н.. Влияние температуры на вылупление, активность и утилизацию липидов молоди второй стадии нематод картофельной цисты Globodera rostochiensis и G.pallida . Revue de Nématologie. 1987. 10: 349–354. [Google Scholar] Scholte K, Vos J. Влияние потенциальных культур-ловушек и даты посадки на заражение почвы нематодами картофельных цист и нематодами корневых узлов. Летопись прикладной биологии. 2000; 137: 153–164. [Google Scholar] Stone AR, Thompson PR, Hopper BE. Globodera pallida присутствует в Ньюфаундленде. Репортер болезней растений. 1977; 61: 590–591. [Google Scholar]

Статистическое управление Канады, 2013 г. Производство картофеля в Канаде. Каталожный № 22-008-Х Т.10, вып. 2.

Sun F., Miller S, Wood S, Côté MJ. Возникновение картофельной нематоды-цисты, Globodera rostochiensis , на картофеле в регионе Сент-Амабль, Квебек, Канада. Болезнь растений. 2007; 91: 908. [Google Scholar] Townshend JL. Модификация и оценка аппарата для прямого извлечения с помощью ватного фильтра Остенбринка. Nematologica. 1963; 9: 106–110. [Google Scholar] Тернер С. Снижение популяции нематод картофельных цист ( Globodera rostochiensis , G. pallida ) на полевых почвах в Северной Ирландии.Летопись прикладной биологии. 1996. 129: 315–322. [Google Scholar]

Turner SJ, Evans K. 1998. Происхождение, глобальное распространение и биология картофельных цистных нематод ( Globodera rostochiensis (Woll.) И Globodera pallida (Stone). Стр. 7–26 in Р. Маркс и Б. Броди, ред. Нематоды с кистами картофеля. Биология, распространение и контроль. Кембридж, Великобритания: University Press.

Webley DP, Jones FGW. Наблюдения за Globodera pallida и G. rostochiensis на раннем картофеле.Патология растений. 1981; 30: 217–224. [Google Scholar]

Whitehead AG, Turner SJ. 1998. Стратегии управления и регулятивного контроля для нематод картофельных цист ( Globodera rostochiensis и Globodera pallida ). Стр. 135–152 в Р. Маркс и Б. Броди, ред. Картофельные цистовые нематоды, биология, распространение и борьба. Кембридж, Великобритания: University Press.

Золотая киста картофеля, нематода Globodera rostochiensis Патотип Ro1 в регулируемом районе Сент-Амабль в Квебеке, Канада

Золотистая картофельная нематода Globodera rostochiensis (Wollenweber, 1923) Behren является экономически важным паразитом картофеля (Solanum tuberosum L.subsp. tuberosum) и признан карантинным вредным организмом на международном уровне (2). Этот вредитель поражает растения картофеля и вызывает задержку роста ботвы и корневой системы, пожелтение листьев и потерю урожая клубней (2). Схема патотипа, предложенная Kort et al. выделяет пять патотипов (Ro1, Ro2, Ro3, Ro4 и Ro5) G. rostochiensis с использованием дифференциальных клонов Solanum (1). Несколько генов устойчивости и локусов количественных признаков (QTL), которые были идентифицированы у диких видов Solanum, придают устойчивость к различным G.rostochiensis и интрогрессированы в коммерческие сорта картофеля (2). Определение патотипа (ов) G. rostochiensis необходимо для реализации эффективных стратегий управления, которые включают использование устойчивых сортов картофеля. G. rostochiensis был обнаружен в муниципалитете Сен-Амабль, Квебек (Квебек), Канада в 2006 г. (3) и впоследствии охарактеризован (4). В этом исследовании цисты были собраны с 11 репрезентативных зараженных полей и подтверждены как G. rostochiensis (3). Патотипы этих нематод были оценены на семи дифференциальных клонах (S.tuberosum subsp. tuberosum cv. Дезире, S. tuberosum × S. andigena cv. Maris Piper, S. kurtzianum гибрид 60.21.19, S. vernei гибрид 62.33.3, S. vernei гибрид 58.1642 / 4, S. vernei гибрид 65.346 / 19 и S. multidissectum гибрид P55 / 7) в 2007 и 2009 гг. , в каждый литровый пластиковый горшок, содержащий 907 г (2 фунта) почвы (3: 1 суглинок / песок v v-1), был посажен один дифференциальный клон Solanum и засеяно 15 цист с 1 из 11 полей. Были созданы пять повторов для каждой комбинации Solanum-нематода, и горшки были размещены в полностью рандомизированном порядке в теплице при 22 ° C с 16-часовым световым периодом в день.Через девять недель после инокуляции цисты извлекали из каждого горшка и подсчитывали. Был рассчитан коэффициент воспроизводства (Rf) для каждой повторности (Rf = Pf / Pi; Pf — конечный номер кисты, а Pi — исходный номер кисты, добавленный в каждый горшок). Значения Rf использовали для разделения дифференциальных клонов на две группы: «восприимчивые», приводящие к увеличению числа нематод (Rf> 1), и «устойчивые», приводящие к уменьшению числа нематод (Rf ≤ 1) (1). Наши результаты в 2007 и 2009 годах были согласованными, и патотип нематод, собранных со всех полей, был идентифицирован как Ro1.Насколько нам известно, это первый случай выявления патотипа G. rostochiensis в регулируемой зоне Сен-Амабль. Соответственно, сорта картофеля, несущие гены или QTL, устойчивые к патотипу Ro1 G. rostochiensis, могут быть использованы для уменьшения численности нематод на зараженных полях в районе Сент-Амабль, штат Кентукки. Ссылки: (1) J. Kort et al. Nematologica 23: 333, 1977. (2) Р. Дж. Маркс и Б. Б. Броди. Картофельные цистовые нематоды: биология, распространение и борьба. 1-е изд. CAB International, Уоллингфорд, 1998 г.(3) F. Sun et al. Завод Дис. 91: 908, 2007. (4) Q. Yu et al. Жестяная банка. J. Plant Pathol. 32: 264, 2010.

Мультигенная филогения узловатых нематод и молекулярная характеристика Meloidogyne nataliei Golden, Rose & Bird, 1981 (Nematoda: Tylenchida)

Анализ изоферментов

Изоферменты выделены из яйцекладок M . nataliei выявил единственную основную полосу (EST = фенотип S1) и единственную слабую полосу активности эстеразы 8 .Плохо определенные слабые структуры полос изоферментов были описаны для нескольких видов Meloidogyne spp. в том числе Meloidogyne haplanaria 9 , M . dunensis 10 и M . Сильвестрис 11 . Эти слабые полосы считаются второстепенными и имеют низкую ценность для идентификации Meloidogyne spp. Они непоследовательны и часто зависят от увеличения количества гомогенизированных самок, добавленных на лунку 8 .Хотя шаблон EST S1 разрешен для M . nataliei аналогичен сообщенному для M . chitwoodi (MDH = N1a) и M . платани (MDH = N1a), M . nataliei явно отличался от этих видов RKN, поскольку активность MDH не могла быть обнаружена.

Филогенетические отношения внутри рода

Meloidogyne

Тандинган Де Лей и др. . 12 были первыми, кто использовал последовательности гена 18S рРНК для точной реконструкции филогении Meloidogyne . Этот анализ, который включал только 12 видов из Meloidogyne и четыре таксона внешней группы, выявил три клады (I, II и III) в пределах рода. Позже Тигано и др. . 13 , Холтерман и др. . 14 , Kiewnick и др. . 15 и Янссен и др. . 16 с использованием того же гена и большего количества видов подтвердили присутствие этих трех основных клад в пределах Meloidogyne .Несколько других генов также были успешно использованы для реконструкции филогении одного гена Meloidogyne : ITS рРНК 3,11,17,18,19,20,21,22,23,24 , D2-D3 28S рРНК 3,11,15,18,19,20,21,22,23,24,25 ; ген РНК-полимеразы II ( rpb1 ) 26,27 , область между генами COII и 16S рРНК мтДНК 3,20,22,23,24,28 ; hsp90 29 , COI 3,15,16,24,30,31 и рРНК IGS 32 , COII 15 .Однако это было показано Hugall et al . 33 и подтверждено настоящим исследованием, что ген ITS рРНК видов из тропической группы может содержать высокополиморфные копии, что может нарушить филогенетическую реконструкцию. Несколько авторов реконструировали мультигенную филогению Meloidogyne , используя подходы supertree 34 или supermatrix 16,35 , что привело к большему разрешению взаимосвязей.

В нашем исследовании мы оценили мультигенное дерево из набора данных, содержащего эталонные последовательности пяти генов 56 видов Meloidogyne , что составляет более половины известных допустимых видов нематод корневых узлов.Наш филогенетический анализ и несколько опубликованных филогений Meloidogyne показали, что не все виды могут быть отнесены к трем основным кладам. В данном исследовании мы предложили новую нумерацию клад как попытку классифицировать все изученные виды. Изученные здесь виды узловатых нематод распределены между одиннадцатью кладами с сильной или умеренной опорой, семь из которых составляют «суперкладу», содержащую 75% изученных видов. Суперклада содержит кладу I и кладу III sensu Tandingan De Ley et al . 12 . Виды из бывшей клады II обозначены в новые клады II, IV, VI и VII.

Эволюционные тенденции узловатых нематод, составляющих суперклад, были охарактеризованы Tandingan De Ley et al . 12 , Тигано и др. . 13 и Холтерман и др. . 14 . Здесь, за счет включения дополнительных таксонов, мы можем более надежно охарактеризовать эти наблюдаемые закономерности.

Clade I включает видов Meloidogyne , распространенных в более теплом климате, и содержит Meloidogyne incognita , M . Яваница , M . arenaria, и 17 других видов, которые обычно называют тропическим комплексом корневых узловатых нематод. Три вида этого комплекса: M . arenaria , M . incognita и M . javanica , относящиеся к группе Incognita, являются широко распространенными многоядными вредителями многих сельскохозяйственных культур. Meloidogyne phaseoli и M . morocciensis обнаружены в Бразилии и Северной Африке, а M . floridensis известен только из Флориды и Калифорнии, США. Meloidogyne arabicida , M . izalcoensis , M . lopezi , M . paranensis и M . konaensis паразитируют на кофейном дереве и других двудольных растениях в Северной, Центральной и Южной Америке. Meloidogyne thailandica , а представители группы Ethiopica 36 ( M . luci . M . Эфиопика , M . inornata и M . hispanica ) заражают разные двудольные растения, о них сообщалось из Азии, Африки, Южной Америки и Европы.

Митотический партеногенетический Meloidogyne oryzae рассматривался несколькими авторами в кладе III 13,14 . Однако результаты, полученные Негретти и др. . 37 и да Силва Маттос и др. . 38 показали, что образец, использованный для секвенирования гена 18S рРНК Tigano et al .Номер 13 был ошибочно идентифицирован и действительно принадлежал M . graminicola . Настоящие результаты с последовательностью гена ITS рРНК, депонированной да Силва Маттос и др. . 38 показал, что M . oryzae принадлежит к кладе I. Accepting da Silva Mattos et al . ‘s 38 идентификация M . oryzae и последовательность гена ITS рРНК (KY962653-изолят Mo1, KY962654-изолят Mo2), мы рассматриваем последовательности 18S рРНК (AY942631) Tigano et al . 13 , COI (Mh228473, Mh228474) Пауэрс и др. . 31 и D2-D3 28S рРНК (KY962662-изолят Mo2) da Silva Mattos et al . (не опубликовано) как принадлежащий к M . graminicola или другой неизвестный вид.

Секвенирование ядерного генома показало, что M . инкогнита , M . javanica и M . arenaria содержат расходящиеся копии многих локусов.Различная эволюционная история этих копий, вероятно, возникшая в результате исторической гибридизации и дупликаций генома, усложняет как филогенетический анализ, так и идентификацию видов, основанных на последовательностях ядерных генов 26,33,39 . Диагностика большинства видов Meloidogyne затруднена и в первую очередь основывается на генах мтДНК, а именно на генах ND5 и области между COII, и 16S, или на изоферментах. Все виды этой клады, для которых известен репродуктивный способ, являются полиплоидами и включают исключительно митотические партеногенетические виды, за исключением мейотического партеногенетического M . floridensis .

Clade II содержит шесть видов, паразитирующих на однодольных и двудольных. В него входит M . микротила из Северной Америки и M . hapla , который является основным вредителем многих сельскохозяйственных культур во всем мире. Первые виды имеют разные способы размножения: митотический партеногенез и амфимиксис, тогда как M . hapla имеет два режима воспроизводства: мейотический и митотический партеногенез в зависимости от расы. Meloidogyne partityla из Африки и Северной Америки размножается путем митотического партеногенеза.И М . spartelensis , M . дуйци , и М . Репродуктивная стратегия dunensis неизвестна и в настоящее время встречается в Европе или Северной Африке.

Clade III содержит девять видов, паразитирующих на однодольных и двудольных, и в основном распространен на нескольких континентах, за исключением M . salasi найдено в Южной Америке и M . kralli из Европы. Виды этой группы являются исключительно мейотическими партеногенетиками.

В кладе IV содержится M . spartinae , M . marylandi и M . graminis и диапазон его хозяев, по-видимому, ограничен только Poaceae. Эти виды, вероятно, имеют североамериканское происхождение, хотя M . graminis было зарегистрировано в Европе и Южной Америке, а — M . marylandi также встречается в Азии. Meloidogyne spartinae является амфимиктическим видом, тогда как M . graminis — исключительно мейотический партеногенетический.

В кладку V входит M . christiei , который паразитирует только на корнях дуба индейки, и M . ardenensis . Meloidogyne christiei образует небольшие галлы, поражающие ткани, непосредственно окружающие нематоду. Хотя способ размножения этого вида неизвестен, присутствие многих самцов в популяциях может указывать на амфимиксис.

Обе клады VI и VII монотипны; VI содержит M . maritima , который заражает Ammophila arenaria на дюнах Перранпорта, Корнуолл, Великобритания, а VII представлен M . silvestris , паразитирующий на корнях падуба европейского, Ilex aquifolium , в провинции Сория, Испания.

В кладу VIII входят только амфимиктические виды M . mali , который паразитирует на деревьях и древесных растениях из родов Ulmus , Euonymus , Acer и других в Японии.Этот вид, вероятно, был завезен в Северную Америку и Европу из Азии.

Clade IX включает вид M . Артиеллия , М . baetica и M . oleae . Первый вид был обнаружен в Европе, Азии и Северной Африке, паразитируя на однодольных и двудольных, тогда как два других вида обнаружены в Испании с оливковых деревьев и других растений. Способ размножения и количество хромосом этой группы до сих пор неизвестны.

Clade X включает восемь видов: M . аберранс , М . panyuensis , M . камелии , M . ichinohei , M . daklakensis , из Восточной Азии, M . мегадора и М . africana из Африки и M . coffeicola , из Бразилии, паразитирует на кофейных деревьях. Эти виды паразитируют на однодольных и двудольных. Репродуктивный режим известен только у двух представителей этой клады: M . мегадора и М . africana ; оба демонстрируют митотический партеногенез. Meloidogyne africana имеет наименьшее количество хромосом (2n = 21) RKN, которые, как известно, воспроизводятся митотическим партеногенезом 16 .

Наконец, клада XI представляет собой самую раннюю ветвящуюся ветвь RKNs и включает два вида, M . индика и M . наталией .

На основе анализа многих морфологических признаков Джепсон 40 предложил 12 морфологических групп внутри J2, шесть групп перинеальных паттернов у самок и семь групп, основанных на морфологии головы у самцов.Она поместила все изученные виды в несколько групп Meloidogyne , названных в соответствии с наиболее древними из описанных в них видов, а именно: « graminis », « acroneae », « exigua », « nataliei » и другие. Хотя ни одна из этих группировок в точности не соответствует группам, предложенным в настоящем исследовании, существуют некоторые закономерности наложения, которые требуют тщательного анализа и характеристика которых выиграла бы от включения большего количества видов.

Эволюционные отношения

Meloidogyne nataliei с другими нематодами

Филогении, полученные для четырех локусов, проанализированных для M . nataliei выявил достаточную дивергенцию этого вида узловатой нематоды, чтобы продемонстрировать его уникальность среди других видов Meloidogyne . Наша неспособность обнаружить MDH с помощью анализа изоферментов подтверждает предыдущие результаты для M . nataliei ; этот очевидный недостаток является необычной чертой среди Meloidogyne spp. 41 .

Филогенетические деревья, полученные из D2-D3 наборов данных генов 28S и ITS рРНК и мультигенного дерева, показали, что нематода сучков винограда Мичигана сгруппирована с M . indica , в хорошо зарекомендовавшей себя кладе. Оба вида морфологически похожи. Jepson 40 выделил 12 морфологических групп в пределах J2 рода Meloidogyne и поместил M . наталией . М . индика , M . brevicauda и M . propora в группе 1. Эта группа характеризуется сужающимся концом хвоста с очень широким и закругленным концом в J2s. Jepson 40 отметил небольшие качественные различия между видами внутри группы, но на практике их было нелегко определить. Meloidogyne indica и M . brevicauda были зарегистрированы с Индийского субконтинента, а M . propora был найден на Внешних островах Сейшельских островов. В то время как три вышеупомянутых вида распространены в тропиках, M . nataliei родом из Мичигана, который отличается влажным континентальным климатом и является одним из самых холодных регионов прилегающих Соединенных Штатов. Мы предполагаем, что M . nataliei — инвазивный вид для Мичигана, который, вероятно, был интродуцирован вместе со своим растением-хозяином, Vitis labrusca , одним из 17 видов, обитающих в более теплом климате на юго-востоке США 42 .Если это так, будущие нематологические исследования в этом регионе, вероятно, расширят известное распространение M . наталией .

Наши результаты показывают, что M . nataliei вместе с M . indica представляет собой раннюю ветвь нематод корневых узлов, которые обладают общими, возможно, предковыми характеристиками. Молекулярные результаты опровергают гипотезу Гольдштейна и Триантафиллу 43 , которые предположили, что нематода, вызывающая завязку корня мичиганского винограда, может не принадлежать к Meloidogyne .Фани и др. . 44 предоставили молекулярную характеристику M . indica и уже отмечал, что этот вид нематод корневого узла следует рассматривать как наиболее предковый таксон рода, основываясь на молекулярных данных.

Meloidogyne nataliei — диплоидный амфимиктический вид, который имеет гаплоидный набор только из четырех хромосом 41 . Четыре хромосомы M . nataliei относительно большие по сравнению с таковыми у других видов Meloidogyne .Причем M . nataliei размножается исключительно перекрестным оплодотворением. Наши результаты подтверждают гипотезу Triantaphyllou 45,46 о том, что виды амфимиксов Meloidogyne с низким числом хромосом являются наследственными признаками, от которых произошли митотические партеногенетические виды RKN.

Ryss 47 считал пратиленхид наиболее близкими к Meloidogyne из-за общих морфологических характеристик области губ и строения глотки, и эти морфологические сходства могут указывать на общее происхождение между Meloidogynidae и Pratylenchidae.Тесная связь Meloidogyne с Pratylenchidae дополнительно подтверждается филогенетическим анализом области D2-D3 28S рРНК 48 . Используя ген 18S рРНК для оценки филогении тиленхид, Holterman et al . 14 также предположил, что корневые нематоды произошли от предка, подобного Pratylenchus . Удивительно, но морфология области губ M . nataliei Молодь и самцы J2 сильно склеротизированы, что напоминает картину, наблюдаемую у Pratylenchus .Крепкий стилет и хвост с широко закругленным концом у M . Молодь nataliei J2 имеет сходство с молодыми особями Pratylenchus . Эти особенности могут хорошо отражать плезиоморфное состояние рода Meloidogyne .

Тенденции эволюции узловатых нематод

Triantaphyllou 45 обобщил цитогенетику узловатых нематод и предположил, что облигатные амфимиктические виды с n = 18 или 19 следует рассматривать как близкородственные предкам Meloidogyne .Он также полагал, что низкое количество хромосом у большинства других нематод подтверждает полиплоидное происхождение большинства видов Meloidogyne . Янссен и др. . 16 пришли к выводу, что число основных гаплоидных хромосом у рода Meloidogyne могло быть столь же низким, как n = 7. Филогенетическое расположение амфимикта M . nataliei с n = 4 в базовом положении по отношению ко всем другим видам Meloidogyne подтверждает гипотезу о низком числе хромосом у предковых видов.

Кастаньоне-Серено и др. . 49 заметил, что обширное разнообразие внутри RKN с точки зрения хромосомного набора отражает сложную эволюцию внутри рода, включающую дупликацию генома, полиплоидизацию, интрогрессию и гибридизацию. Сдвиг репродуктивного режима, наряду с развитием широкой полифагии, вероятно, совпадает с быстрой диверсификацией суперклада Meloidogyne , что может объяснить неразрешенные отношения между кладами I-VII.Возникновение партеногенеза коррелировало у нематод корневых узлов с его возрастающей значимостью как паразитов сельскохозяйственных культур 14 .

Было высказано предположение, что современные апомиктические виды произошли от диплоидных половых предков, в то время как обязательные партеногенетические митотические виды произошли от факультативно партеногенетических мейотических видов после подавления мейоза во время созревания ооцитов 50 . Однако отображение репродуктивного режима на мультигенной филогенетической оценке 16 вместе с результатами, представленными здесь, не подтверждают эту гипотезу, скорее предполагая, что переход к митотическому партеногенезу мог произойти раньше, чем возникновение мейотического партеногенеза у корневых нематод. эволюция.

Картофельная цистовая нематода | Министерство сельского хозяйства Миннесоты

Научное название: Globodera rostochiensis (золотая нематода) и Globodera pallida (бледная цистовая нематода)

Родной ареал: Анды в Южной Америке

Под угрозой

Высокие популяции картофельных цистных нематод (PCN) могут снизить урожайность картофеля до 80 процентов. В отсутствие растений-хозяев цисты остаются в состоянии покоя, но живы в почве в течение 20 и более лет.Цисты распространяются через почву на семенных клубнях, сельскохозяйственной технике и корнях или луковицах других растений, выращиваемых на зараженных полях. Кисты также перемещаются ветром и паводковой водой. Поля всех видов картофеля (для обработки, для запекания целиком и т. Д.) Могут иметь значительные потери урожая, но риск распространения ПХН на новые поля наиболее высок для картофеля, продаваемого на семена. Семенной картофель с полей, зараженных ПХН, нельзя продавать в Канаду, и там, где он есть, торговля с другими странами также серьезно пострадает.

Распределение

Бледная цистовая нематода встречается в Ньюфаундленде, Канаде и Айдахо. В Канаде золотая нематода встречается на Ньюфаундленде, острове Ванкувер, Квебеке и Альберте. В Соединенных Штатах строгие карантинные меры удерживают золотую нематоду в пределах девяти округов Нью-Йорка с 1941 года.

Ни один из видов PCN никогда не был обнаружен в Миннесоте.

Биология

Картофельные цистные нематоды — это живущие в почве червеобразные организмы, длиной менее 1 мм.Эти нематоды питаются корнями картофеля, помидоров, баклажанов и других растений семейства пасленовых. По мере кормления самка набухает и прорывается наружу от корня. При оплодотворении самцом она произведет до 500 яиц, затем она умрет, и ее внешняя стенка тела затвердеет, превратившись в кисту, чтобы защитить яйца.

Самки Globodera rostochiensis на устойчивом картофеле (Ro-1) — цистная нематода желтого картофеля (yPCN). Бонсак Хаммераас, NIBIO — Норвежский институт биоэкономических исследований, Багвуд.org
под лицензией Creative Commons Attribution-Noncommercial 3.0.

Нормативный статус: Регулируется

Картофельные цистные нематоды регулируются Министерством сельского хозяйства США (USDA) для предотвращения их распространения из зараженных в настоящее время районов в Айдахо и Нью-Йорке. В настоящее время в Миннесоте нет правил, потому что они не были найдены в штате. Однако при экспорте семенного картофеля из Миннесоты обычно требуются отрицательные результаты опроса. Если бы PCN был обнаружен в Миннесоте, вероятно, были бы реализованы государственные и федеральные постановления по ограничению передвижения и контролю или искоренению.

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *