Корневин, инструкция по применению корневина
Без удобрений в нашем садово-огородном деле никак не обойтись, это всем известно. Какие только подкормки мы не используем: минеральные, органические, бактериальные, комплексные удобрения и другие. Ведь так хочется получить рекордный урожай на даче и улучшить декоративный вид наших любимцев, посаженных просто «для души».«Корневин»
Наука не стоит на месте и в этой области. В последнее десятилетие в продаже появилась новая серия биостимуляторов (фитогормонов), существенно укрепляющих иммунную систему растений и стимулирующих их корнеобразование. К этой серии относится и «Корневин» (аналог гетероауксина), который мы по старинке называем удобрением. Но это неверно, «Корневин» – не удобрение и не способен заменить собою минеральные, органические, бактериальные подкормки для растений, но вот для обеспечения активной жизнедеятельности корешков наших зелёных питомцев он подходит отлично.
Итак, что такое «Корневин»
«Корневин» – это биостимулирующий препарат для растений, в состав которого входит индолилмасляная кислота (ИМК) в концентрации 5 г/кг, которая, попадая на растение, слегка раздражает его покровные ткани, чем стимулирует появление каллюса («живых» клеток, образующихся на поверхности ранки) и корней. А сама ИМК, попадая в почву, в результате естественного синтеза преобразуется в фитогормон гетероауксин, который, собственно, и стимулирует корнеобразование. Поэтому «Корневин» действует медленнее, нежели гетероауксин в чистом виде, зато действие его более продолжительно.На картинке ниже два растения: первое не было обработано «Корневином», второе подверглось обработке.
Сравнение корневой системы растений. Фото с сайта rastenia-mira.ru
«Корневин»:
- способствует быстрому прорастанию семян;
- улучшает укоренение черенков;
- помогает развитию корневой системы саженцев и рассады;
- снижает воздействие на растение неблагоприятных внешних факторов, таких как засуха, переувлажнение, перепады температур.
Но это совсем не означает, что мы нашли панацею от всех садовых бед, потому как фитогормоны, содержащиеся в «Корневине», не защищают растения от болезней и вредителей и не заменяют стандартные подкормки органикой или минеральными удобрениями. Кроме того, «Корневин», конечно, слегка снижает воздействие неблагоприятных внешних факторов, но не спасает растения, если вы забываете их поливать либо, напротив, сильно переувлажняете почву.
Правила работы с «Корневином»
Биостимулятор очень схож с гетероауксином, но различия всё же имеются. Если гетероауксин относится к безопасным препаратам класса IV, то «Корневин» (класс безопасности III) не так безвреден, поэтому- не разводите препарат в посуде для пищи, используйте отдельную тару;
- когда работаете с порошком, нельзя принимать пищу, курить и пить;
- при попадании на руки нужно немедленно вымыть их с мылом;
- при случайном попадании в организм даже микроскопических доз выпить большое количество воды и принять активированный уголь;
- хранить порошок в недоступном для детей месте.
Хотя индолилмасляная кислота, которая содержится в составе препарата, и не числится среди канцерогенов, а сам порошок не фитотоксичен, этой простой рекомендацией всё же стоит воспользоваться.
Применение «Корневина» в сухом виде
Непосредственно перед высадкой корневую систему растения следует опудрить порошком. Если корешки небольшие, можно просто окунуть их в баночку с биостимулятором. Тут следует отметить, что «Корневин» – достаточно сильный препарат, поэтому для опудривания корневой системы экзотических растений, цветочных культур и декоративных кустарников следует смешать стимулятор с равным количеством мелко истолчённого активированного угля.Черенки готовы к укоренению
Также в порошок «Корневина» полезно добавить немного фунгицида (химическое вещество, убивающее болезнетворные микробы), примерно 10:1. Растворяясь в почве, препарат усиливает корнеобразование и активизирует защитные функции ваших зелёных питомцев. При размножении растений черенкованием припудриваются свежие срезы, а затем черенок помещают в ёмкость с водой либо почвенным субстратом.
Также можно обрабатывать листовые черенки цветочных растений: фиалки, глоксинии, бегонии, циперусов и других. Припудривать черенки следует осторожно, на высоту не более 1 см от среза, а если вы окунаете кончик черенка в порошок, то перед посадкой слегка отряхните его от излишка «Корневина». Припудривание мест среза «Корневином» улучшает и срастание прививок.
Применение водного раствора «Корневина»
Водный раствор этого мощного биостимулятора применяют для замачивания семян, луковиц, клубнелуковиц и для полива молодых растений. Стандартная пропорция для полива: 5 г порошка развести в 5 л воды. Поливать саженцы и рассаду следует под самый корень: один раз сразу после посадки, второй – через 2-3 недели.
Можно использовать водный раствор «Корневина»
Расход раствора для полива на одно растение:
- саженцы крупных деревьев и высокорослых кустарников: 2-2,5 л;
- саженцы низкорослых и среднерослых кустарников: 300-350 мл;
- рассада цветочных культур: 30-40 мл;
- рассада овощных культур: 50-60 мл.
Можно, конечно, замачивать в водном растворе корни саженцев, рассады и основания черенков, примерно на 12-15 часов перед высадкой, добавив чайную ложку порошка (без горки) на 1 л воды, но целесообразнее (да и удобнее) их всё-таки припудривать. А вот семена, луковицы и клубнелуковицы очень даже полезно подержать в подобном растворе 18-20 часов перед высадкой. Кстати, водный раствор «Корневина» должен быть всегда свежеприготовленным.
В заключение хочу отметить, что многие дачники (в том числе я и мои соседи по даче) далеко не всегда используют биостимуляторы, подобные «Корневину» и гетероауксину. Разве что для растений, которые трудно и медленно укореняются: айва, слива, яблоня, груша, вишня и прочие. А используете ли вы биостимуляторы? Если да, то какие?
Вам также могут быть полезны материалы:
как использовать препарат, инструкция по применению средства для комнатных растений
Любому садоводу известно, что практически все растения на дачном участке нуждаются в удобрении. С этой целью они применяют самые разнообразные подкормки: минеральные, бактериальные, органические, комплексные удобрения и т. д. Сравнительно недавно в продаже появились биостимуляторы, которые укрепляют иммунную систему растений и стимулируют образование корней. Одним из таких средств является корневин, который способен обеспечить активную жизнедеятельность корней садовых питомцев.
Так что это за препарат, как использовать корневин на садовом участке? Эти моменты, а также инструкцию по применению такого средства следует рассмотреть более подробно.
Особенности корневина
Это биостимулирующий препарат, предназначенный как для садовых, так и для комнатных растений, в составе которого содержится индолилмасляная кислота. Попадая на растение, она начинает немного раздражать его покровные ткани, стимулируя образование каллюса («живых» клеток, которые возникают на поверхности ранки) и корней. Попав в почву, в результате естественного синтеза происходит преобразование кислоты в фитогормон гетероауксин, который и способствует возникновению корней.
Кроме того, благодаря корневину:
- начинают быстро прорастать семена;
- улучшается укоренение черенков;
- происходит развитие корневой системы рассады и саженцев;
- уменьшается неблагоприятное воздействие на растение таких внешних факторов, как переувлажнение, засуха, перепады температур.
Однако, содержащиеся в корневине фитогормоны, не способны защитить растение от вредителей и болезней, и не смогут заменить стандартные подкормки минеральными удобрениями или органикой. Также этот биостимулятор хоть и способствует уменьшению воздействия неблагоприятных внешних факторов, но не может спасти растение от переувлажнения или засухи.
Как правильно пользоваться корневином?
Это средство имеет большое сходство с гетероауксином, но все же имеются некоторые различия. Если последнего относят к безопасным препаратам 4 класса, то корневин в этом случае имеет третий класс. Его не считают безвредным, поэтому при работе с ним лучше использовать перчатки, а использованную упаковку рекомендуется сжигать, а не выбрасывать.
Применение корневина предусматривает соблюдение следующих мер безопасности:
- нельзя препарат разводить в пищевой посуде, а лучше использовать для этого отдельную тару;
- при работе с порошком нельзя пить, курить и употреблять пищу;
- если средство попало на руки, их необходимо как можно быстрее вымыть с мылом;
- если в организм случайно попадет даже микроскопическое количество препарата, следует выпить большое количество воды, а также принять активированный уголь;
- порошок необходимо хранить в месте, недоступном для детей.
Хотя содержащаяся в корневине индолилмасляная кислота и не считается канцерогеном, а непосредственно сам порошок не фитотоксичен, таких рекомендаций все-таки стоит придерживаться.
Корневин: инструкция по применению
Этот препарат представляет собой мелкодисперсный порошок цветом топленого молока. Главное при его покупке – обратить внимание на срок годности, так как расходуется биостимулятор очень мало и одной пачки хватает надолго. Его нельзя хранить в открытой упаковке, а лучше всего пересыпать в стеклянную или пластиковую баночку с хорошо закручивающейся крышкой.
Применение препарата в сухом виде
Перед тем как высадить растение, его корневую систему необходимо опудрить порошкообразным корневином. Если корешки имеют небольшие размеры, то их достаточно окунуть в емкость с биостимулятором. Необходимо отметить, корневин является довольно сильным препаратом. Поэтому если это средство используют для опудривания корней цветочных культур, экзотических растений и декоративных кустарников, то его необходимо смешать с равным количеством активированного угля, который следует мелко измельчить.
Очень полезно добавлять в порошок небольшое количество фунгицида (химическое вещество, способного уничтожать болезнетворных микробов) в соотношении 10:1. Растворяясь в земле, порошок способствует усилению образования корней и помогает активизироваться защитным функциям растений. При их размножении путем черенкования свежие срезы необходимо припудрить, после чего черенок помещают в емкость с почвенным субстратом или водой для завязки корневой системы.
Таким же образом припудривают листовые черенки таких цветочных растений, как:
- фиалки;
- бегонии;
- глоксинии;
- циперусы и т. д.
Припудривают черенки очень аккуратно, а если их кончики опускают в порошок, то перед посадкой их следует слегка отряхнуть от его излишка. Припудривание корневином срезов помогает улучшить срастание прививок.
Применение водного раствора препарата
В инструкции по применению этого препарата указано, что можно использовать его водный раствор для замачивания луковиц, семян, клубнелуковиц, а также для полива растений. В последнем случае 5 г порошка разводят в 5 л воды. Рассаду и саженцы поливают под самый корень, причем в первый раз это следует делать сразу после посадки, а второй – спустя 2 – 3 недели.
Можно, конечно, в водном растворе замачивать корни рассады, саженцев и основания черенков, но лучше всего их все-таки припудривать. А вот луковицы, семена и клубнелуковицы крайне полезно подержать в таком растворе перед высадкой в течение 18 – 20 часов. Такое жидкое средство всегда должно быть свежеприготовленным.
Таким образом, стало ясно, что такое корневин, и как его использовать. Благодаря такому стимулятору сильно снижается воздействие неблагоприятных факторов на различные растения. Такой препарат считается относительно безвредным и его можно использовать не только на дачных участках, но и в квартире для комнатных цветов.
Оцените статью: Поделитесь с друзьями!Что такое корневин и как им правильно пользоваться. Статьи компании «Розалия»
В этой статье – все о проращивании семян и черенков с помощью препарата Корневин
Все садоводы знают, что при выращивании рассады из семян, проведения работ по черенкованию плодовых культур, невозможно добиться 100% положительного результата, ведь часть черенков может погибнуть, а семена – прорасти только наполовину. Чтобы избежать таких досадных промахов, необходимо правильно подготовить посевной материал к проращиванию, для чего можно использовать различные приемы.
В этой статье – все о проращивании семян и черенков с помощью препарата Корневин, который может заставить расти даже самые слабые черенки и старые семена.
СТИМУЛЯТОР КОРНЕОБРАЗОВАНИЯ КОРНЕВИН: СОСТАВ И СПОСОБЫ ПРИМЕНЕНИЯ
Корневин – это биостимулятор для растений, который изготовлен на основе индолилмасляной кислоты (ИМК), ее концентрация в препарате составляет 5 г/кг. Раздражающе воздействуя на живые ткани растений, препарат стимулирует развитие каллюса, из которого впоследствии образуются новые корни. Во влажном грунте ИМК преобразуется в особое вещество – Гетероауксин, который выступает в роли стимулятора дальнейшего корнеобразования. По сравнению с чистым Гетероауксином, Корневин имеет пролонгированное воздействие на растения, что помогает развитию крепкой корневой системы на черенках с высокой всасывающей способностью.
Кроме ИМК в состав Корневина включены следующие микроэлементы: фосфор, калий, молибден и марганец, которые способствуют усиленному питанию укореняемых растений в период формирования корневой системы.
Корневин представляет порошок светло-кремового цвета, с кристаллической структурой, который легко и без остатка растворяется в воде.
ПРЕИМУЩЕСТВА И НЕДОСТАТКИ КОРНЕВИНА
Для начала поговорим о положительных качествах Корневина, которые делают препарат незаменимым при укоренении черенков и посеве семян культурных и декоративных растений.
Итак, применение Корневина помогает:
- Улучшить всхожесть семенного материала.
- Повысить устойчивость растений к ряду неблагоприятных факторов. Особенно эффективно препарат помогает растениям выстоять при природных катаклизмах: засуха, ливневые дожди, возвратные заморозки, перепады температуры, обильные росы и туманы.
- Увеличить размер и количество клубней и луковиц.
- Стимулировать цветение однолетних декоративных растений, ускоряя этот процесс на несколько недель.
- Ускорить корнеобразование любых растений.
- Увеличить размеры плодов у овощных и плодовых культур.
- Предотвратить осыпание плодов с деревьев.
- Концентрированный раствор Корневина помогает избавиться от сорняков.
- Повысить иммунитет комнатных и уличных растений.
Положительный эффект от применения препарата наблюдается только при использовании Корневина в дозировке, указанной производителем. Переусердствовать с использованием Корневина не рекомендуется, ведь тогда можно наблюдать абсолютно противоположный эффект – растения останавливаются в росте; их корни быстро загнивают и отмирают, что чревато гибелью саженцев, рассады, деревьев и кустарников.
Корневин не безвреден для людей и животных, препарат отнесен к 3 степени опасности (умеренно опасен), поэтому при пользовании популярным стимулятором, соблюдайте осторожность и правила личной гигиены. При случайном проглатывании препарата, примите активированный уголь и выпейте несколько стаканов воды.
КОРНЕВИН: КАК ПРАВИЛЬНО ПРИМЕНЯТЬ ПРЕПАРАТ
Инструкция по применению Корневина всегда указана производителем. Существует два способа применения препарата:
- Опыление сухим веществом – порошком Корневина опудривают корни растений, в него обмакивают черенки перед высадкой их в череночные ящики. Очень важно при покупке препарата обращать внимание на срок изготовления. После вскрытия упаковки, порошок пересыпают в герметичную, сухую, стеклянную тару.
- Использование приготовленного свежего раствора – один пакет Корневинамассой 5 г разводят в 5 л чистой воды. Приготовленный раствор нельзя хранить, поэтому его используют сразу после разведения вещества в воде.
Розы – признанные фавориты садовых клумб, эти роскошные цветы часто укореняют самостоятельно. Применение Корневина помогает сократить время образования корней на молодых растениях.
Способ применения Корневина
Дозировка
Обмакивание черенков перед посадкой сухой порошок – слегка смочите нижнюю часть стебля водой, опудрите сухим Корневином, оставьте вещество на 1-4 часа.
Опудрить нижнюю часть черенка тонким слоем (примерно 1 см), выдержать 1-4 часа.
Опудривание корней роз взрослых – перед посадкой нанесите тонкий слой порошка Корневина на всю корневую систему, излишки смахнуть мягкой кистью или ватным тампоном. На глаз, ровным тонким слоем опудривают все корни при пересадке.
Добавление в посадочную яму – этот способ подходит при осенней пересадке роз, когда устанавливается умеренная температура воздуха, ведь в жару применение Корневина вызывает обратный эффект и загнивание корней. Стенки посадочной ямы опудривают порошком Корневина, полезно сразу к сухой смеси добавить фунгицид, что предотвратит грибковые заболевания. Опудривание проводят аккуратно распределяя порошок тонким слоем.
Замачивание черенков роз в растворе Корневина 5 г препарата разводят в теплой воде на 5 л. Черенки замачивают на 12 часов, после чего высаживают на доращивание в тепличку или парник.
Аналогично розам, Корневин применяют при черенковании декоративных и ягодных кустарников.
ПРОРАЩИВАНИЕ СЕМЯН С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ КОРНЕВИНА
Перед посадкой семян на рассаду, их можно обработать Корневином для ускорения появления всходов. В данном случае удобно пользоваться раствором препарата, который готовят в концентрации 1 ч. л. сухого вещества на 1 литр воды. Но не все семена требуется обрабатывать стимуляторами. Семена с плотной кожурой не стоит замачивать в биопрепарате – он может спровоцировать появление плесени и гибель проростков. Нельзя пользоваться жидкими растворами для укоренения пылевидных семян, их замачивание почти всегда приводит к загниванию посевного материала.
Замачивание семян перед посадкой на рассаду проводят не менее 6 часов.
ОБРАБОТКА ПОСАДОЧНОГО МАТЕРИАЛА И РАССАДЫ
Кроме семян, обрабатывают Корневином саженцы плодовых и декоративных деревьев, кустарников, цветочную и овощную рассаду.
Луковицы, клубни, корневища 5 г на 5 литров растворить в теплой воде 18 часов
Саженцы деревьев 5 г на 5 л воды растворить в теплой воде. Полив под каждое растение в количестве 2 л
Ягодные и декоративные кустарники. Разведение 5 г на 5 л. Полив в каждую лунку в количестве 350 мл
Рассада овощных культур. Разведение 5 г на 5 л. Полив под корень 50 мл приготовленного раствора
Рассада цветов и декоративных трав. Разведение 5 г на 5 л. Полив под корень 40 мл разведенного раствора.
Без применения Корневина и с применением раствора КорневинаИспользование Корневина намного увеличивает процент укоренения растений, поэтому препарат пользуется популярностью у садоводов. Используйте его по инструкции, чтобы дать саженцам и корневищам максимум возможностей для приживаемости.
инструкция по применению, отзывы, хранение препарата
Автор: Елена Н. Категория: Биорегуляторы Опубликовано: Последние правки:
Любому, кто пытался прорастить семена, пересадить растение и окоренить черенки, известно, что добиться стопроцентного результата очень непросто, а подчас и невозможно, поскольку далеко не все семена прорастают, не все черенки жизнеспособны и не все пересаженные растения приживаются на новом месте. Минимизировать риски помогают препараты, которые называются стимуляторами роста. Одним из самых надёжных препаратов этой группы является Корневин. О свойствах этого стимулятора роста и о том, как им пользоваться, и будет наш рассказ.
Назначение Корневина
Корневин – это биостимулятор, который применяют на растениях, чтобы симулировать образование корней на черенках различных культур (как декоративных и цветочных, так ягодных и плодовых). Обработка Корневином также способствует более быстрому прорастанию семян, более успешному укоренению черенков саженцев и развитию у них мощной корневой системы, снимает стресс и повышает приживаемость растений после пересадки или при размножении делением.
Действие Корневина
В состав Корневина входит индолилмасляная кислота (ИМК), которая и является основным действующим веществом: попадая в почву, ИМК преобразуется в гормон гетероауксин, стимулирующий рост каллюса и корней за счёт раздражения покровных тканей растения. Обрабатывать Корневином растения можно не более двух раз: перед посадкой и после неё.
Обработанные Корневином черенки не только легче укореняются, но и значительно реже подвергаются заражению гнилью. Корневая система под действием этого биостимулятора развивается быстрее, а само растение становится более устойчивым к избытку или недостатку влаги в почве, а также к резким изменениям температуры.
Аналогом Корневина в той или иной степени является препарат Гетероауксин.
Достоинства Корневина:- препарат можно применять практически для всех культур;
- развитие черенков после применения Корневина значительно ускоряется;
- у всех растений корневая система развивается лучше и быстрее;
- саженцы легче адаптируются и укореняются;
- применение препарата может остановить осыпание с дерева плодов;
- у растений повышается устойчивость к неблагоприятным факторам внешней среды;
- Корневин совместим со многими препаратами;
- у препарата вполне доступная цена.
- при передозировке препарата растения могут получить ожог или подвергнуться гниению;
- водный раствор препарата иногда даёт слабый эффект, а иногда не эффективен вообще.
Инструкция по применению Корневина
Корневин – сухое применение
- Выпускается Корневин в виде мелкодисперсного порошка оттенка топлёного молока в пакетах разной ёмкости: по 4, 5, 10, 50 г. Применяется он в сухом виде и в растворе.
- Перед тем, как сажать растения, их корни опудривают Корневином. Сухой порошок Корневина можно смешать в равных частях с порошком древесного угля или в пропорции 10:1 с фунгицидом (например, биопрепаратом Фитоспорин-М). Такая смесь не только поможет растению быстрее укорениться, но и усилит его сопротивляемость грибковым заболеваниям.
- Черенки можно опудрить корнеобразователем, а можно просто окунуть в емкость с порошком, после чего стряхнуть его излишки. Окунать черенки следует не глубже, чем на 2 сантиметра, а листовые черенки – не глубже, чем на 1 см. После обработки Корневином черенки опускают в воду или сажают в подготовленный субстрат на окоренение.
Применение раствора Корневина
Раствор Корневина применяют для полива растений, а также для обработки их луковиц, семян и клубней. Раствор составляют 0,1%, то есть 1 г Корневина растворяют в 1 л воды. Семена и луковицы в таком растворе замачивают на 16-20 часов. Эффективен только свежеприготовленный раствор корнеобразователя.
Расход раствора Корневина:
- саженцы деревьев (как плодовых, так и декоративных) – 2-3 л на 1 дерево;
- саженцы кустарников – 0,25-0,3 л на 1 куст;
- рассада плодовых и овощных культур – 50-60 мл на 1 саженец;
- рассада цветов – 30-40 мл на 1 саженец.
Совместимость
Корневин совместим практически со всеми инсектицидами и фунгицидами. Для проверки совместимости необходимо смешать небольшое количество двух препаратов. Если появился осадок или хлопья, препараты несовместимы.
Токсичность Корневина
Препарат относится к 3-му классу опасности, поэтому не слишком токсичен ни для человека, ни для животных, однако при отравлении Корневином могут проявляться неприятные симптомы. Кроме того, порошок обладает летучестью, поэтому требует соблюдения мер предосторожности.
Меры предосторожности
Работать с препаратом нужно в пластиковом фартуке, латексных перчатках, марлевой повязке или респираторе и в очках. Для приготовления рабочего раствора нельзя использовать посуду, которая применяется для приема или приготовления пищи и содержания питьевой воды. Во время проведения процедуры нельзя пить, принимать пищу и курить. После окончания работы необходимо принять душ и надеть чистую одежду.
Пустую упаковку следует сжечь или выбросить вместе с бытовыми отходами.
Доврачебная помощь
Приведённые ниже рекомендации предназначены только для оказания ПЕРВОЙ помощи, после которой нужно немедленно обратиться к врачу и следовать его назначениям! НЕ ЗАНИМАЙТЕСЬ САМОЛЕЧЕНИЕМ!
- Препарат хоть и не очень опасен, но попадание его в организм или на кожу может иметь неприятные последствия.
- Если препарат попал в пищеварительную систему, необходимо сразу выпить несколько стаканов воды с активированным углем из расчёта по 1 таблетке на 10 кг массы тела и немедленно вызвать врача!
- При попадании Корневина в глаза нужно промыть их в открытом положении большим количеством проточной воды.
- При попадании препарата на кожу место контакта следует промыть большим количеством холодной проточной воды.
Хранение Корневина
Срок годности препарата – 3 года со дня изготовления. Корневин нужно хранить в темном сухом месте при температуре не выше 25 ºC. Держите его в недоступном для детей и животных месте отдельно от продуктов питания и лекарственных средств.
Отзывы
Мария: Корневин – сильный стимулятор, который укрепляет сопротивляемость растений всевозможным неблагоприятным факторам. Я применяю его для поддержки ослабленных болезнью или пересадкой комнатных растений, для проращивания семян, а также для поддержки окореняющихся черенков.
Пётр: пользуюсь Корневином при выращивании рассады и при пересадке сеянцев на грядку. Рассада получается крепенькая и жизнеспособная, очень редко болеет и легко переносит пикировку и пересадку.
Анастасия: я заядлая дачница, очень люблю всяческие эксперименты. Первый раз использовала Корневин для укрепления распикированных сеянцев: просто добавила порошок корнеобразователя в грунт. Рассада получилась на удивление крепкой, с развитой корневой системой. Полила раствором Корневина слабый саженец кустового зверобоя, и он стал оживать прямо на глазах.
Официальный сайт и рекомендации производителя: http://www.grepharm.ru/products/159/404/
Литература
- Информация про Фитогормоны
Разделы: Препараты Биорегуляторы
После этой статьи обычно читают
Добавить комментарий54625 | Горшок мягкий 10.71.11 | Литьевой горшок, технический 2 литра, полиэтиленовые, 50 штук размером 13*12, 50 штук размером 23*18, 50 штук размером 36*30 по согласованию с заказчиком для теплицы | 13 393,50 KZT | Итоги. Закупка не состоялась | |
54626 | Горшок пластиковый с поддоном 10 л 10.71.11 | Горшок пластиковый с поддоном 10 л для теплицы | 58 035,50 KZT | Итоги. Закупка состоялась | |
54627 | Горшок пластиковый с поддоном 15 л 10.71.11 | Горшок пластиковый с поддоном 15 л для теплицы | 66 964,50 KZT | Итоги. Закупка состоялась | |
54628 | Горшок пластиковый с поддоном 20 л 10.71.11 | Горшок пластиковый с поддоном 20 л для теплицы | 87 053,50 KZT | Итоги. Закупка не состоялась | |
54629 | Горшок пластиковый с поддоном, 7л 10.71.11 | Горшок пластиковый с поддоном 7 л для теплицы | 49 107,00 KZT | Итоги. Закупка состоялась | |
54630 | Кашпо подвесное 10.71.11 | Кашпо подвесное, пластиковое, высота 14 см для теплицы | 27 678,60 KZT | Итоги. Закупка не состоялась | |
54631 | Паллета (поддон, касета) для рассады 10.71.11 | Кассета для рассады — 54 ячейки, для теплицы | 12 589,20 KZT | Итоги. Закупка не состоялась | |
54632 | Паллета (поддон, касета) для рассады 10.71.11 | Кассета для рассады — 28 ячеек, для теплицы | 12 053,70 KZT | Итоги. Закупка не состоялась | |
54633 | Торф 36.00.11 | Вермокулит рыхлящая влагоудерживающая добавка. Рыхлящая, влагоудерживающая, аэрирующая добавка для почвогрунтов. Улучшает структуру почвы, препятствует закислению грунта, появлению на его поверхности плесени и мха, защищает почву от солнечных лучей, поддерживает стабильный температурный режим, для теплицы | 513 390,00 KZT | Итоги. Закупка состоялась | |
54634 | Торф 10.71.11 | Агроперлит разрыхлитель почвы. Агроперлит — высокоэффективная разрыхляющая добавка к почве, улучшающая ее структуру и повышающая продуктивность, для теплицы | 196 430,00 KZT | Итоги. Закупка не состоялась | |
54635 | Торф 10.71.11 | Торф для приготовления органических удобрений, выращивания рассады, при посадке древесно-кустарниковой растительности и др., упаковка 100 л для теплицы | 240 064,00 KZT | Итоги. Закупка не состоялась | |
54636 | Удобрение «Цветочное счастье антистресс» 250 мл (прикорм, биостимулятор) 20.15.39 | Удобрение «Цветочное счастье антистресс» 250 мл (прикорм, биостимулятор) | 32 143,00 KZT | Итоги. Закупка не состоялась | |
54637 | Удобрение азотно-фосфорное (прикорм, биостимулятор) 20.15.79 | Монофосфат калия комплексное удобрение, удобрение Kh3PO4 используется в растворённом виде для корневых и внекорневых подкормок, для теплицы | 1 084,83 KZT | Итоги. Закупка не состоялась | |
54638 | Удобрение азотно-фосфорное (прикорм, биостимулятор) 20.15.79 | Азофоска минеральное удобрение комплексное, твердое, сложное, гранулированное азотно-фосфорно-калийное удобрение. Содержит фосфор в полностью водорастворимой форме. Применяется для допосевного (основного) и припосевного (припосадочного) внесения, а также для подкормок независимо от типов почв, для теплицы | 42 857,00 KZT | Итоги. Закупка не состоялась | |
54639 | Удобрение азотно-фосфорное (прикорм, биостимулятор) 20.15.79 | Азотное удобрение — аммиачная селитра, удобрение используют для роста цветов, кустарников и деревьев, по согласованию заказчика | 33 928,00 KZT | Итоги. Закупка не состоялась | |
54641 | Удобрение органо-минеральное (прикорм, биостимулятор) 20.15.59 | Паста Гуми, для стимуляции роста садовых и огородных культур. Данный комплекс, несмотря на наличие в его составе агротуков, относится именно к гуминовым препаратам, так как до 60% его массы занимают соли натрия. Остальные 40%, это традиционные минеральные удобрения – азот, фосфор и калий, с добавками микроэлемента, канистра 10л для теплицы | 15 900,00 KZT | Итоги. Закупка не состоялась | |
54642 | Удобрение органо-минеральное (прикорм, биостимулятор) 20.15.59 | Содержит основные элементы питания (азот, фосфор и калий), микроэлементы в особой хелатной форме и гуминовые биологически активные вещества – Энергены, объём 250мл (органо-минеральный раствор для комнатных растений), по согласованию заказчика | 87 000,00 KZT | Итоги. Закупка не состоялась | |
54643 | Халат лаборанта 14.14.12 | Халат лаборанта, размеры со согласованию с заказчиком, для теплицы | 69 642,90 KZT | Итоги. Закупка не состоялась | |
54644 | Термометр 26.51.51 | Термометр (-50+50) для теплицы | 8 035,71 KZT | Итоги. Закупка не состоялась |
Корневин: биостимулятор особого назначения
Опытные садоводы и огородники знают: корневин – уникальное средство, вызывающее быстрое образование корневой системы растения.
Наша сегодняшняя публикация – для начинающих аграриев, еще не успевших узнать всех достоинств этого замечательного средства.
Итак, что такое Корневин? Порошок цвета топленого молока, имеющий в своем составе индолилмасляную кислоту (ИМК), калий, фосфор, молибден, марганец и некоторые другие микроэлементы. Этот состав вызывает незначительное раздражение покровных тканей растения, что, в свою очередь, стимулирует «пятку» черенка. Это способствует возникновению каллуса, который затем становится полноценными корешками.Покупая Корневин, прежде всего обращайте внимание на дату выпуска. Препарат имеет очень ограниченный срок годности, поэтому использовать его нужно как можно скорее. А открытый пакетик вообще не стоит хранить больше одного дня.
Корневин выпускается в виде порошка, и использовать его можно как в первоначальном виде, так и предварительно растворив в воде. Сухим препаратом опыляют предварительно вымоченные черенки (если черенки будут сухими, «пятки» не смогут удержать Корневин), а затем высаживают на постоянное место.
Иногда обработанные черенки сначала сажают в контейнеры, а после того, как растение приживется, выносят в открытый грунт.
Если же вы решили использовать раствор Корневина, то черенки нужно оставить в нем как минимум на сутки. Черенки следует погрузить в раствор на одну треть.
Помимо стимулирования роста корней, Корневин обладает еще одним замечательным свойством – он является прекрасным стимулятором роста. С его помощью ускоряют прорастание семян, он благотворно влияет на корневую систему рассады. Корневин способен снижать негативное действие высоких температур и излишней влажности почвы.
Вот только от болезней и вредителей Корневин защитить растения не может. Не стоит также забывать о полноценных подкормках – фитогормоны Корневина не смогут их заменить.
Некоторые дачники считают, что корневин и другой известный препарат – Гетероаукин – это практически одно и то же. Это не совсем так. Если Гетероуакин – препарат абсолютно безопасный (класс опасности 4), то с Корневином нужно быть осторожным. Ему присвоен третий класс опасности, а значит, работать с препаратом нужно в резиновых перчатках, а пустую упаковку следует не выбрасывать, а сжечь.
А теперь – несколько советов по использованию Корневина.
Если вам не нужно использовать сразу всю упаковку Корневина, лучше пересыпать его в банку с плотно закрывающейся крышкой – так он дольше сохранит полезные свойства.
Если обрабатываете корневую систему растения сухим Корневином, его следует смешать с измельченным активированным углем.
Если ваше растение имеет маленькие корешки, поставьте его на короткое время в водный раствор Корневина.
Чтобы обработать семена или клубнелуковицы, используют раствор Корневина из расчета пять граммов препарата на пять литров воды. Полить саженцы нужно два раза: непосредственно после высадки и через три недели. Поливать обязательно под корень.
Такой же раствор можно использовать для полива рассады. @hozvo_sad_ogorod
Препарат Корневин от Агроуспех. Фото до и после использования — Ботаничка.ru
Пересадка это всегда стресс для растения. Нужно соблюдать определенные правила, что бы растения успешно прижились после пересадок:
- обязательно закалить рассаду и саженцы перед посадкой;
- не допустить перерастания рассады;
- не допускать повреждения корневой системы;
- соблюдать агротехнику при пересадке растений, например, рассаду нельзя удобрять в течение 2 недель с момента посадки, а поливать необходимо каждые 2-3 дня и маленькими порциями, до момента пока не начнется ее рост.
Но что делать если растения находились в неблагоприятных условиях или погодные условия не позволили посадить рассаду вовремя? Выход есть — использовать стимуляторы роста. В этой статье мы расскажем как усилить ростовые процессы в корневой системе и тем самым снизить последствия от неблагоприятных условий, а иногда и спасти погибающее растение.
Корневин это биостимулятор в форме смачивающего порошка (СП). Порошком можно присыпать корни или развести суспензию для опрыскивания растений, а также подготовить раствор для замачивания корней, луковиц, клубней или полива саженцев и рассады. Действующее вещество Корневина индолилмасляная кислота, которая в почве превращается в гетероауксин. Корневин очень мягко действует на растения и помогает укоренению черенков:
- семечковых- яблоня, груша;
- косточковых — слива, вишня, черешня, персик;
- ягодных — смородина, крыжовник и др.;
- виноградной лозы;
- цитрусовых и декоративных (роза, сирень, калина, чубушник (жасмин) и других культур;
- для улучшения приживаемости саженцев при пересадках.
Биостимулятор способен значительно укрепить растение, он поможет перенести негативное влияние внешних факторов: появление засухи, избыточной влаги, заморозков. Препарат повышают иммунитет растений против болезней и паразитов, а также увеличивает продолжительность жизни растения.
Как действует Корневин от Агроуспех?
Действующее вещество Индолилмасляная кислота, которая стимулирует ткани растений и заставляет его наращивать подземную часть. Попадая на растение, средство стимулирует производство новых клеток на месте ранок, а в почве преобразуется в гетероауксин – фитогормон, который и укрепляет корневую систему. В отличие от инъекции чистого гетероауксина, Корневин действует гораздо дольше от 20 до 60 дней.
Обратите внимание, что Корневин не является удобрением и не заменит подкормки. Наоборот, из-за увеличения корнеобразования перед применением биостимулятора в землю нужно внести органические и минеральные удобрения.
Фото до обработки препаратомРезультат использования препарата через 14 днейКак использовать Корневин от Агроуспех?
Норма расхода Корневин СП.
1. Обработки черенков плодовых, ягодных и декоративных культур 10-20 мг / один черенок опудривание нижних срезов.
2. Обработка плодовых, ягодных, декоративных культур, их сеянцев и саженцев 1г/литр замачивание корневой системы перед высадкой на 6 часов. Полив под корень через 10 дней после посадки. Расход 0,5 л на растение.
Корневин выпускается упаковкой размером 5г., 10 г., 0,5 кг и 1кг.
Применение биостимулятора на основе танинов влияет на структуру корней и улучшает устойчивость растений томата к засолению
ВЭЖХ-ESI-FTMS показало, что основными компонентами VIVEMA TWIN являются фенольные соединения, принадлежащие к семейству танинов
Из-за различного происхождения Химический состав биостимуляторов существенно различается не только с количественной, но и с качественной точки зрения 19 . Действительно, состав биостимулятора может варьироваться от отдельных соединений до сложных комбинаций биологически активных компонентов, характеризуемых лишь частично 20 .Однако биологическое действие биостимуляторов на растения зависит от сложности этих матриц, и по этой причине их характеристика представляет собой проблему, которую необходимо решить.
В этой работе была проведена предварительная спектрофотометрическая характеристика биостимулятора VIVEMA TWIN, чтобы выполнить начальный химический скрининг, полезный для последующих анализов с помощью HPLC-ESI-FTMS. Спектрофотометрическое определение включало количественное определение общего количества полифенолов (TPC), антоцианов (TAnthC) и флаван-3-олов (TF3C), оцененных методами Folin-Ciocalteu, pH-дифференциалом и DMAC, соответственно.Результаты количественного определения в УФ / видимой области представлены в таблице 1.
Таблица 1 Спектрофотометрическое определение в УФ / видимой области биоактивных соединений и антиоксидантных свойств VIVEMA TWIN.Интересно, что VIVEMA TWIN показала очень высокое значение TPC по сравнению с растительным сырьем, входящим в топ-100, с высоким содержанием полифенолов 21 . Полифенолы характеризуются наличием в своей структуре одной или нескольких фенольных групп, способных принимать электроны и восстанавливать не только активные формы кислорода, но также органические субстраты и минералы 22 .Сильные окислительно-восстановительные свойства полифенолов объясняют значительный интерес к питанию человека и растений для предотвращения состояний, связанных с чрезмерным окислительным стрессом 23 . Среди полифенолов можно выделить несколько классов, в основном из-за близкого структурного сходства, и лишь несколько анализов могут избирательно обнаруживать и количественно определять эти молекулы. В этом контексте дифференциальный метод pH может обнаруживать присутствие антоциановых соединений благодаря их характеристикам, отображающим различный цвет в зависимости от pH смеси окружающей среды 14,24 .4- (Диметиламино) коричный альдегид (реагент DMAC) может избирательно реагировать с флавонольными соединениями со свободными мета-ориентированными гидроксильными группами в флавоноидном каркасе и с одинарной связью в 2,3-положении С-кольца 14,24 , 25 . Спектрофотометрическое определение, полученное с помощью этих анализов, показало, что даже при отсутствии антоцианов (LOD: 3 мкг · мл -1 ; LOQ: 10 мкг · мл -1 ), почти 17% смеси состояло из флаван-3- ols.
Чтобы идентифицировать наиболее важные активные соединения, присутствующие в VIVEMA TWIN, использовали HPLC-ESI-FTMS.Основываясь как на характере фрагментации каждого соединения, так и на их времени удерживания, анализ HPLC-ESI-FTMS позволил предположительно идентифицировать 16 соединений (рис. 1). Среди идентифицированных соединений четыре являются органической кислотой [маннуроновая кислота ( № 1 ), галловая кислота ( № 2 ), валоновая кислота ( № 3 ) и флоионовая кислота ( № 14 )], три являются конденсированными. дубильные вещества, полученные в результате конденсации GA ( # 4 , # 5 и # 6 ), и три из них представляют собой лактоновую форму # 3 [эллаговой кислоты ( # 7 ), валоновой кислоты ( # 8 ) и 2,3,8-триметилеллаговая кислота ( № 15 )].В частности, среди лактонов № 8 представляет собой дилактон. Кроме того, анализ HPLC-ESI-FTMS выявил другие биоактивные соединения, такие как производные кофейной кислоты ( № 13 ), один флавоноид ( № 9 ), один лигнан ( № 11 ) и два природных стероида ( № 12 и № 16 ). Молекулярная масса (MW), время удерживания (RT), молекулярная формула и CAS ID каждого соединения представлены в таблице 2. Большинство идентифицированных соединений представляют собой флаван-3-олы и, в частности, простые и сложные таниновые строительные блоки GA. ( # 2 , # 3 , # 4 , # 5 , # 6 , # 7 , # 8 , # 15 ) 15 .
Рисунок 1Химическая структура соединений, идентифицированных в VIVEMA TWIN с помощью HPLC-ESI-FTMS. Каждое химическое соединение представлено в таблице 2.
Таблица 2 Химическая характеристика VIVEMA TWIN с помощью анализа HPLC-ESI-FTMS.Сильные антиоксидантные свойства GA ( # 2 ) и его производных описаны в литературе, а в нескольких исследованиях утверждается возможная роль и применение GA в питании растений на разных стадиях роста, особенно на ранних этапах роста корней и корней. Развитие растений 26,27 .Например, Сингх и соавторы показали, что нанесение экзогенного GA на семена риса привело к увеличению длины корня по сравнению с контролем 27 . Более того, Negi с коллегами показали, что GA может обладать ауксиноподобной функцией, непосредственно воздействуя на длину корня и развитие 17 . Соединение № 3 и связанные с ним монолактоны ( № 7 и № 15 ) и дилактон ( № 8 ) также являются гидролизуемыми танинами, принадлежащими к семейству эллагитаннинов 28 , которые обладают антиоксидантной активностью 29 .Что касается конденсированных танинов, то они являются сильными антиоксидантными соединениями 30 и благодаря этому свойству широко используются в качестве дополнения к рациону человека и животных 31 . Однако знания об использовании продуктов на основе танинов в сельском хозяйстве ограничены 16 и требуют изучения. Кроме того, в биостимуляторе были обнаружены и другие биоактивные соединения, не принадлежащие к семейству дубильных веществ. Известно, что соединение № 9 , молекула флавона, участвует в развитии длины корня и в росте растений 32 .Соединения № 12 и № 16 соответствуют природным стероидам, принадлежащим к семейству тритерпеноидов, которые проявляют интересные фармакологические эффекты на человека, модулируя активность Na + / K + -АТФазы 33,34 . Однако их потенциальное действие на физиологию растений до сих пор неизвестно. Наконец, соединения № 11 и № 14 — это два природных вещества, полученные в результате гидролиза древесины 35 .
VIVEMA TWIN обладает антиоксидантными свойствами
В этой работе антиоксидантные свойства VIVEMA TWIN были исследованы с точки зрения как восстанавливающей, так и улавливающей радикалы активности с помощью анализов FRAP, ABTS и DPPH.Данные этих измерений показаны в Таблице 1. В целом, все анализы показали очень высокие значения по сравнению с данными, указанными в базе данных Phenol-Explorer для фруктов и овощей высшего ранга 21 . Однако из-за отсутствия ранее проведенных антиоксидантных оценок биостимуляторов невозможно провести сравнение с продуктами, принадлежащими к этой категории. Представленные здесь результаты указывают на сильную антиоксидантную активность этого биостимулятора, предполагая, что этот продукт может помочь растениям пережить различные стрессы, связанные с накоплением активных форм кислорода (АФК).
АФК играют разные роли на заводах 36 , однако их перепроизводство может привести к нежелательным последствиям для растений 37 . Действительно, после образования АФК необходимо максимально эффективно детоксифицировать, чтобы минимизировать потенциальный ущерб. Клетки растений защищены сложной антиоксидантной системой, включающей как неферментативную, так и ферментативную защиту 38 . Полифенольные соединения растений, хранящиеся в плодах, цветках и листьях растений, относятся к первой категории 39 .В этом контексте биостимуляторы на растительной основе, происходящие из промышленных отходов, могут быть богаты полифенолами, которые при применении к растениям могут способствовать положительному эффекту за счет снижения потенциальных окислительных угроз.
В настоящее время оценка антиоксидантных свойств фруктовых и овощных экстрактов является решающим моментом для лучшего понимания механизма действия добавок на растительной основе, которые будут использоваться для питания человека и животных 40 . И наоборот, хотя большая часть биостимуляторов получают из растений, этот подход до сих пор не используется для питания растений.С другой стороны, измерения антиоксидантных параметров биостимуляторов растений помогут понять механизм их действия и будут способствовать их оптимальному использованию в сельском хозяйстве.
VIVEMA TWIN и галловая кислота способны изменять структуру корня томата
Чтобы понять развитие корня на ранних этапах роста как в присутствии, так и в отсутствие биостимулятора или солевого стресса, визуализационные анализы были выполнены с использованием Root Программное обеспечение System Analyzer.С помощью этого программного обеспечения мы смогли преобразовать 2D-изображение в черно-белый каркас, в котором корни разных порядков имеют разные цвета 41 . Следовательно, мы могли визуализировать не только структуру корней, но и сравнивать общее количество корней различных образцов растений. На рис. 2 представлена репрезентативная картина корней растений, не подвергавшихся стрессу, и растений, подвергшихся солевому стрессу, после обработки водой, 1 млLL –1 VIVEMA TWIN или 75 мкМ GA. Мы показали, что в стандартных условиях растения, обработанные биостимулятором (рис.2B) имеют более развитую корневую систему по сравнению с контрольными (рис. 2A) и обработанными 75 мкМ GA (рис. 2C) корнями из-за наличия большого количества боковых корней. Когда растения подвергались стрессу с помощью 100 мМ NaCl (рис. 2D), архитектура корня сильно страдала с последующим уменьшением размера вторичных корней. С другой стороны, у растений, подвергшихся солевому стрессу, которые дополнительно обрабатывали биостимулятором (фиг. 2E) или только 75 мкМ GA (фиг. 2F), наблюдали восстановление радикальной архитектуры.В частности, этот эффект оказался более заметным у растений, обработанных биостимулятором.
Рисунок 2Корневая архитектура, визуализированная анализатором корневой системы. Корни собирали через 8 дней от начала обработки. На верхних панелях показаны корни нестрессированных растений только после обработки водой ( A ), 1 мл L -1 VIVEMA TWIN ( B ) или 75 мкМ галловой кислоты ( C ). На нижних панелях показаны корни растений, подвергнутых стрессу 100 мМ NaCl и дополнительно обработанных только водой ( D ), 1 мл L -1 VIVEMA TWIN ( E ) или 75 мкМ галловой кислоты ( F ).
Как показано на рис. 3, растения, выращенные в оптимальных условиях и обработанные VIVEMA TWIN или 75 мкМ GA, не показали уменьшения количества боковых корней (рис. 3A), длины (рис. 3B) или веса свежих корней ( Рис. 3C), что свидетельствует об отсутствии отрицательного воздействия биостимулятора на архитектуру корня. Более того, растения, выращенные в отсутствие солевого стресса и обработанные 75 мкМ GA, показали увеличенную длину корня и сырую массу по сравнению с контрольными растениями и растениями, обработанными VIVEMA TWIN. Различное влияние на рост корней наблюдалось при наличии стресса.Когда солевой стресс был вызван применением 100 мМ или 200 мМ NaCl, сильное и статистически значимое снижение всех биометрических параметров было зарегистрировано у растений, не обработанных биостимулятором или GA. Наиболее сильные стрессовые эффекты наблюдались после нанесения 200 мМ NaCl. Сопоставимые эффекты в аналогичных экспериментальных условиях также наблюдались ранее и сообщалось о 42 . В этом случае растения томатов, подвергнутые воздействию NaCl в различных концентрациях (0, 50, 100 мМ), показали снижение биометрических параметров, таких как свежий вес побегов, высота растения и количество листьев, в корреляции с более высокой концентрацией соли.Наконец, когда VIVEMA TWIN применялся к растениям, подвергшимся стрессу 100 мМ NaCl, увеличивалось количество корней (с 7,0 ± 1,1 до 10,4 ± 0,8), длина корней (с 2,8 ± 0,3 до 5,1 ± 0,6 см) и масса свежих корней ( от 23,3 ± 3,1 до 39,3 ± 1,2 мг). Аналогичные эффекты проявлялись и после обработки 75 мкМ GA, при которой количество корней увеличилось до 9,6 ± 1,7, их длина — до 4,2 ± 0,8 см, а их сырая масса — до 40,3 ± 1,5 мг. Более того, сопоставимая тенденция, хотя и в меньшей степени, наблюдалась также у растений, подвергшихся стрессу 200 мМ NaCl и обработанных такой же дозой биостимулятора или галловой кислоты.Наконец, наблюдаемые эффекты, проявляющиеся после применения биостимулятора, могут быть не только результатом синергетического действия различных химических соединений, присутствующих в смеси, но также могут быть вызваны защитным антиоксидантным действием, обеспечиваемым применением VIVEMA. БЛИЗНЕЦ. Более того, наши данные показывают, что этот биостимулятор можно использовать для повышения устойчивости томатов к солевому стрессу и, возможно, других культур.
Рисунок 3VIVEMA TWIN улучшает характеристики корней томатов при солевом стрессе.Общее количество боковых корней ( A ), длина корня ( B ) и масса свежих корней ( C ) растения, обработанного 1 мл L -1 VIVEMA TWIN, 75 мкМ галловой кислоты или только водой. Корни собирали через 8 дней от начала обработки. Биометрические параметры оценивали как на нестрессированных, так и на 100 мМ или 200 мМ NaCl растениях. Столбцы представляют собой средние значения ± стандартное отклонение двадцати биологических повторов. Статистические различия в одной и той же серии обозначены разными буквами (ANOVA, апостериорный критерий Тьюки – Крамера, p ≤ 0.05).
VIVEMA TWIN и галловая кислота способны изменять структуру корня также при длительном солевом стрессе
Развитие корней томатов также изучалось во время длительной стрессовой обработки путем оценки биометрических параметров, таких как длина корня. , свежий вес корней и индекс NDVI. NDVI — это прибор, предназначенный для измерения коэффициента отражения растительности как в красном, так и в ближнем инфракрасном диапазоне — два параметра, которые используются для определения здоровья растений. Измерения NDVI могут варьироваться от -1 до 1, причем более высокие значения указывают на лучшее здоровье растений 43 .Корни, использованные для измерения биометрических данных, были собраны через 24 часа после второй (дополнительный рис. 1) и четвертой (рис. 4) обработки биостимулятором. Также был проведен параллельный тест в тех же экспериментальных условиях, чтобы сравнить эффекты, показанные после нанесения VIVEMA TWIN, с эффектами, возникающими при нанесении 75 мкМ GA или только воды. Как показано на дополнительном рис. 1, через 24 часа после второй обработки растений 100 мМ NaCl не оказал значительного влияния на длину корней и сырую массу, но сильно повлиял на NDVI.Действительно, во второй временной точке отбора проб это значение уменьшилось с 0,72 ± 0,06 до 0,61 ± 008. С другой стороны, обработка биостимулятором или галловой кислотой позволила полностью восстановить индекс NDVI. Другой эффект наблюдался через 24 ч после четвертой обработки (рис. 4). В этом случае мы не наблюдали каких-либо изменений NDVI между растениями, поливаемыми 100 мМ NaCl или только водой (рис. 4C), хотя сильное снижение сырой массы было зарегистрировано после обработки солью (рис. 4B).Отсутствие изменений NDVI может быть связано с возможной адаптацией растений к длительному солевому стрессу 44 . С другой стороны, даже несмотря на то, что обработка 100 мМ NaCl не оказывала отрицательного воздействия на NDVI, после применения VIVEMA TWIN или GA было зарегистрировано значительное увеличение NDVI. В этом случае обработки привели к еще более высоким значениям по сравнению с контрольными растениями, выращенными в оптимальных условиях. Что касается веса корней, то после применения биостимулятора или галловой кислоты мы наблюдали восстановление негативных эффектов, вызванных солевым стрессом.Наконец, не наблюдалось отрицательного воздействия на параметры роста корней после обработки биостимулятором или 75 мкМ GA по сравнению с нестрессированными растениями.
Рисунок 4VIVEMA TWIN усиливает рост растений в условиях солевого стресса. Длина корня ( A ), масса свежего корня ( B ) и NDVI ( C ) растений, обработанных 1 мл L -1 VIVEMA TWIN, 75 мкМ галловой кислоты или только водой. Корни собирали через 4 недели после обработки, тогда как индекс NDVI измеряли перед сбором растений.Биометрические параметры оценивали как на нестрессированных, так и на 100 мМ NaCl растениях. Столбцы представляют собой средние значения ± стандартное отклонение двадцати биологических повторов. Статистические различия в одной и той же серии обозначены разными буквами (ANOVA, апостериорный критерий Тьюки – Крамера, p ≤ 0,05).
VIVEMA TWIN положительно модулирует экспрессию генов, участвующих в реакции на солевой стресс, рост корней и доступность фосфатов
Чтобы понять молекулярный механизм действия VIVEMA TWIN, была проведена полногеномная экспрессия (анализ RNA-Seq) на корни растений, подвергшихся стрессу 100 мМ NaCl, и обработанные 1 мл L -1 VIVEMA TWIN.Корни обоих условий собирали через 24 часа после последней обработки. Эти данные сравнивали с экспрессией генов у 100 мМ растений, подвергшихся стрессу NaCl, которые обрабатывали водой вместо биостимулятора (контроль). Наконец, были проведены исследования Gene Ontology (GO) (дополнительный рисунок 2) и Киотская энциклопедия генов и геномов (KEGG) (дополнительный рисунок 3) с целью определения основных биологических функций и путей дифференциально экспрессируемых ключевых генов 45 .
Анализ RNA-Seq выявил повышенную регуляцию 285 генов и понижающую регуляцию 171 гена, соответственно, при лечении биостимулятором в присутствии солевого стресса.В таблице 3 показаны гены с повышенной активностью (FC> 1,7). Большинство этих генов участвуют в реакции на абиотический стресс (63%), росте корней (18,5%) и других метаболических функциях (18,5%) на основе анализа GO. Наиболее значимо подавленные гены (1 / FC> 1,7, FC <0,6) представлены в таблице 4.
Таблица 3 Список генов с наиболее значимой активацией (FC> 1,7; p <0,05; n = 3) из РНК. -Seq анализ корней томатов. Таблица 4 Список генов с наиболее значимой подавляемостью (1 / FC> 1.7, FC <1,6) из анализа RNA-Seq на корнях томатов.Гены, связанные с доступностью питательных веществ
Предполагается, что некоторые из этих усиленных генов участвуют в доступности питательных веществ, включая ген, индуцируемый фосфатным голоданием TPSI1 (FC = 0,145), транспортер фосфата (FC = 0,377), домен SPX -содержащий белок (FC = 0,384), фактор транскрипции bHLH 037, (FC = 0,465), IDS4-подобный (FC = 0,504), myb-подобный белок (FC = 0.514) и пурпурная кислая фосфатаза (FC = 0,534), которые участвуют в дефиците фосфата, очень важном элементе для роста растений. Обычно эти гены индуцируются в присутствии фосфатного голодания, в то время как уменьшение их транскриптов наблюдается при пополнении запасов Pi- (неорганического фосфата) в голодных растениях томатов. Эти данные предполагают, что растения, обработанные VIVEMA TWIN и выращенные в условиях солевого стресса, могут иметь лучшую способность поглощать фосфор по сравнению с необработанными и подвергнутыми стрессу растениями.
Гены, связанные с абсцизовой кислотой (ABA)
Несколько генов, участвующих в передаче сигналов ABA, регулировались по-разному. К ним относятся фактор транскрипции WRKY (FC = 2,95), трегалоза-6-фосфатфосфатаза ( T6PP ) (FC = 2,76), ABA 8′-гидроксилаза (FC = 2,25), протеинфосфатаза 2C ( FC = 1,89) и HVA22-подобный белок (FC = 1,81). Повышение активности этих генов связано с увеличением активности АБК, что коррелирует с повышением стрессоустойчивости 46 .АБК, также называемая «гормоном стресса», играет основную роль в развитии растений и играет ключевую роль как в интеграции сигналов стресса, так и в контроле реакции на стресс 47 . В частности, в зависимости от статуса растения факторы транскрипции WRKY действуют как активаторы или репрессоры передачи сигналов ABA, а также участвуют в адаптации растений к солевому стрессу 48,49 . Трегалоза-6-фосфатфосфатаза (T6PP) катализирует превращение трегалозы-6-P (T6P) в трегалозу, дисахарид, участвующий в повышении устойчивости к стрессу 50,51 .T6P, хорошо растворимое и низкомолекулярное соединение, действует как осмопротектор, повышая устойчивость к солевому стрессу 52 . Более того, экспрессия T6PP и содержание трегалозы увеличиваются в ответ на АБК, и синергетическое действие между дисахаридом и АБК также приводит к положительному эффекту на удлинение корня у арабидопсиса 53 . ABA 8′-гидролаза, представляет собой фермент цитохрома P450, участвующий в катаболизме ABA и, что важно, в поддержании гормонального баланса 54 .Было показано, что протеинфосфатаза 2C играет ключевую роль в передаче сигнала АБК в Arabidopsis , а также в 55 , тогда как HVA22-подобный белок в зерновых представляет собой белок, индуцированный АБК / стрессом, повышающая регуляция которого ингибирует образование гиббереллина, индуцированного GA. большие вакуоли 56 . Наши данные предполагают, что у томатов аналогичная трансдукция сигнала, связанная с солевым стрессом ABA, активируется для выживания растения из-за применения биостимулятора по сравнению с Arabidopsis и другими видами.
Обильные белки позднего эмбриогенеза (LEA)
Эта группа генов представлена двумя разными белками семейства обильных белков позднего эмбриогенеза (LEA) (FC = 2,50 и FC = 1,97). Даже если механизм действия этих белков у томатов полностью не известен, активация этих генов у растений тесно связана с увеличением стрессоустойчивости, в частности, в ответ на ограничение воды 57 . Стресс засухи имеет много общего с солевым стрессом, поскольку в присутствии соли вода менее доступна для растений.Ответ на стресс включает активацию общих механизмов, включая синтез белков LEA 58 .
Другие гены, связанные с реакцией на стресс
Идентифицированные гены, относящиеся к этой категории: Na + / H + обменник 8 (NHE8) (FC = 2,19), C 2 H 2 белок цинкового пальца (C 2 H 2 ZnFP) (FC = 2.08), Чувствительный к засухе белок цинкового пальца (DRZnFP) (FC = 1,93) и Глутатион-S-трансфераза (GST) (FC = 1,92). NHE8 , как известно, участвует в солевом и засуховом стрессе у растений томатов и, в частности, кодирует антипортер плазматической мембраны, необходимый для поддержания гомеостаза Na + / K + 59 . Его активация обычно приводит к повышению устойчивости растений томата к солевому стрессу 60 . C 2 H 2 ZnFP и DRZnFP — это гены, кодирующие факторы транскрипции, активируемые в стрессовых условиях.Что касается глутатиона (GST), этот фермент катализирует конъюгацию между восстановленным глутатионом (GSH) и электрофильными субстратами. В частности, эти ферменты были в значительной степени изучены на предмет их способности связывать токсичные экзогенные соединения, тем самым защищая растения от нескольких типов стрессов 61,62 , включая реакции на абиотический стресс 62,63 , и их повышенная регуляция может указывать на защитный антиоксидант. эффект от применения VIVEMA TWIN.
Гены, связанные с развитием корня
Было показано, что ряд генов, активируемых применением биостимулятора, вовлечены в процесс развития корня.Это R2R3MYB транскрипционный фактор 41 (FC = 2,34), Главный фасилитаторный белок суперсемейства (FC = 1,81) и ксилоглюкан-эндотрансглюкозилаза-гидролаза 5 (FC = 1,76). Различные исследования показали, что эти гены участвуют в формировании первичных и боковых корней, воздействуя на отложение целлюлозы ( ксилоглюкан-эндотрансглюкозилаза-гидролаза 5 ) 64 , транспорт ауксина ( Главный фасилитаторный белок суперсемейства ) 65 в Arabidopsis и в различных других аспектах, таких как развитие корневых волосков, удлинение корня и архитектура корня (фактор транскрипции R2R3MYB 41 ) 66 .Наконец, как сообщалось выше, также T6PP , по-видимому, играет роль в удлинении корня.
Проверка гена с помощью анализа qPCR
ДанныеRNA-Seq были проверены с помощью анализа qPCR на выбранных генах, в значительной степени регулируемых применением биостимулятора (дополнительная таблица 2). Анализ qPCR проводили на образцах, полученных из обработанных VIVEMA TWIN корней растений, выращенных в условиях солевого стресса (100 мМ NaCl), и сравнивали с корнями необработанных растений, подвергшихся стрессу.Корни собирали через 24 часа после четвертой обработки, в тот же момент времени, для которого был проведен анализ RNA-Seq. Кроме того, для сравнения данных экспрессии генов, связанных с применением биостимулятора, с данными чистого соединения, количественную ПЦР также проводили на корнях стрессированных растений, обработанных 75 мкМ GA. Корни собирали в тот же момент, как описано ранее. Данные экспрессии представлены в таблице 5.
Таблица 5 Сравнение данных RNA-Seq с данными qPCR.В общем, повышающая / понижающая регуляция выбранных генов, наблюдаемая в экспериментах с RNA-Seq, была подтверждена анализом qPCR на образцах, обработанных биостимулятором. Иными словами, экспрессия генов растений, обработанных 75 мкМ GA, по-видимому, существенно не модулируется обработкой. Только фактор транскрипции WRKY 61 , GST и GSyT показали значительную ( p ≤ 0,05) повышающую регуляцию, как и у растений, обработанных VIVEMA TWIN. Основываясь на этих результатах, биостимулятор, по-видимому, эффективен в отношении экспрессии генов, участвующих в реакции на стресс, росте корней и потреблении питательных веществ.Интересно, что применение чистого GA показало более низкий эффект на экспрессию генов, что свидетельствует о возможном синергическом действии с другими компонентами, присутствующими в смеси VIVEMA TWIN. Изучение синергетического действия соединений в смеси является актуальной темой исследований в области биостимуляторов. Действительно, необходимо исследовать не только роль отдельных компонентов, но и эффект, возникающий в результате их взаимодействия в сложной смеси.
Границы | Биостимулирующее действие гидролизата протеина растительного происхождения, полученного путем ферментативного гидролиза
Введение
Растущий спрос на продукты питания, корма, топливо, волокна и сырье, а также растущее истощение ресурсов и деградация экосистем требуют использования более устойчивых методов в системах сельскохозяйственного производства.Несколько органических продуктов, называемых «биостимуляторами», теперь доступны на рынке, чтобы сделать сельское хозяйство более устойчивым. Согласно определению Европейского совета индустрии биостимуляторов (www.biostimulants.eu), «биостимуляторы растений содержат вещества и / или микроорганизмы, функция которых при нанесении на растения или ризосферу заключается в стимулировании естественных процессов для увеличения / улучшения усвоения питательных веществ, эффективность питательных веществ, устойчивость к абиотическому стрессу и качество урожая ». Кауфман и др. (2007) классифицировали органические биостимуляторы на три основные группы на основе их источника и содержания: гуминовые вещества, экстракты морских водорослей и продукты, содержащие аминокислоты.Последняя группа состоит из свободных аминокислот и полипептидов, полученных путем химического и / или ферментативного гидролиза побочных продуктов агропромышленного комплекса животного или растительного происхождения или из специальных культур биомассы (Cavani et al., 2006). Во многих исследованиях (Morales-Payan and Stall, 2003; Parrado et al., 2007; Kowalczyk et al., 2008; Ertani et al., 2009; Gurav and Jadhav, 2013) сообщалось о положительном влиянии внесения гидролизатов протеина в почву и листву на рост. , урожайность и качество плодов сельскохозяйственных культур (например,г., кукуруза, банан, папайя, клубника, красный виноград). Cerdán et al. (2009) и Ertani et al. (2009) наблюдали, что применение гидролизатов белков растительного происхождения на кукурузе и томатах увеличивает потребление питательных веществ, в частности азота и железа, в результате повышения активности нитратредуктазы и глутаминсинтетазы, а также активности Fe (III) -хелатредуктазы, соответственно. Другие авторы подчеркнули положительный эффект биостимуляторов на основе аминокислот в питании растений в качестве хелатирующих агентов (Ashmead et al., 1986). По данным Ertani et al., Гидролизаты белков могут улучшить устойчивость сельскохозяйственных культур к абиотическим стрессам. (2013), которые наблюдали, что внесение в корни гидролизата растительного протеина улучшило устойчивость кукурузы к засолению из-за лучшего метаболизма азота, а также более высокого отношения K / Na и накопления пролина в листьях.
Белковый гидролизат может также действовать как регуляторы роста растений из-за присутствия пептидов. Было обнаружено, что несколько биоактивных пептидов, продуцируемых в различных растениях, обладают фитогормоноподобной активностью (Ito et al., 2006; Кондо и др., 2006). Фитосульфокин, системин, SCR / SP11 и CLE представляют собой эндогенные пептиды растений, участвующие в дифференцировке клеток, индукции ингибиторов протеаз, делении клеток и реакции самонесовместимости пыльцы (Ryan et al., 2002). Недавно Matsumiya и Kubo (2011) выделили из продуктов деградированного соевого шрота пептид, обладающий активностью по стимулированию корневых волосков у Brassica rapa и черенков томатов. Более того, Ertani et al. (2009) наблюдали, что два гидролизата белка проявляли гиббереллиноподобную активность и слабую ауксиноподобную активность.
Помимо биостимулирующего действия белковых гидролизатов на растения, существует также несколько исследований (Ruiz et al., 2000; Cerdán et al., 2009; Lisiecka et al., 2011), в которых сообщается, что некорневые применения коммерческих продуктов гидролизата белка животного происхождения могут вызывают фитотоксичность и угнетение роста растений. Напротив, фитотоксичность и угнетение роста растений томата не наблюдались после некорневой обработки аминокислот растительного происхождения (Cerdán et al., 2009). Некорневые аппликации коммерческого гидролизата протеина животного происхождения вызывали некротические пятна на листьях базилика, в то время как у растений базилика не наблюдалось никаких фитотоксических симптомов и угнетения роста после некорневых обработок коммерческого протеинового гидролизата растительного происхождения «Trainer» до 10 раз по сравнению с рекомендуемой скоростью ( неопубликованные данные).Подавление роста, вызванное гидролизатами белков животного происхождения, по-видимому, связано с более высоким содержанием в них свободных аминокислот (особенно аминокислот небольшого размера, таких как глицин и пролин) и солей (например, NaCl), чем в гидролизатах белков растительного происхождения.
В последнее время растет беспокойство по поводу использования гидролизатов белков животного происхождения с точки зрения безопасности пищевых продуктов, о чем свидетельствует запрет на применение гидролизата белка животного происхождения на съедобных частях сельскохозяйственных культур в органическом сельском хозяйстве (Европейское постановление №354/2014). Дополнительные ограничения могут быть наложены на применение гидролизата животного белка при производстве продуктов питания для вегетарианцев или людей с религиозными диетическими ограничениями на потребление мяса из-за необходимости исключить любое загрязнение пищевых продуктов продуктами животного происхождения.
Разработка новых гидролизатов белков растительного происхождения с высокой биостимулирующей активностью растений стала предметом большого исследовательского интереса. Система ферментативного гидролиза (LISIVEG ® 😉 была недавно разработана Италполлиной С.П.А. (Rivoli Veronese, Италия) для производства гидролизата протеина («Трейнер»), содержащего высокую концентрацию аминокислот и растворимых пептидов. Целью этого исследования было изучить биостимулирующее действие (гормоноподобная активность, поглощение азота и усиление роста) растительного гидролизата протеина «Тренажер» с помощью двух лабораторных биологических анализов (тест скорости удлинения колеоптилей кукурузы, тест на укоренение на черенки томатов) и два эксперимента в теплице (испытание на рост карликового гороха и испытание на поглощение азота томатами).
Материалы и методы
Эксперимент 1: Тест на скорость удлинения колеоптилей кукурузы
Гибрид кукурузы «P1921» ( Zea mays L.), приобретенный у Pioneer Hi-Bred Italia S.r.l., Gadesco Pieve Delmona (CR), Италия, был использован в первом лабораторном испытании. Поверхность семян кукурузы стерилизовали раствором гипохлорита натрия (2%) в течение 20 минут, чтобы избежать чрезмерного загрязнения, затем промывали дистиллированной водой, высевали в пластиковый ящик и помещали в камеру для выращивания (24 ° C) Университета Тусиа, Италия.Проростки кукурузы выращивали в темноте в течение одной недели, пока колеоптили не достигли длины 2–3 см. Апикальные 3–4 мм колеоптилей удаляли, а от оставшейся части вырезали сегмент стандартной длины 2 см. Эти сегменты помещали в чашки Петри диаметром 10 см, содержащие 20 мл шести тестовых растворов: четырех возрастающих концентраций (0,375, 0,75, 1,5 и 3 мл л -1 ) гидролизата растительного белка «Trainer» 1,75 мг л . -1 инодол-3-уксусной кислоты (ИУК) и деионизированной воды.Белковый гидролизат «Трейнер» содержал 35,5% органических веществ, 5% общего азота и 27% аминокислот и растворимых пептидов. Удельный вес продукта 1,1 кг / л. Общий аминокислотный состав, определенный после кислотного гидролиза и анализа с помощью высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ), был следующим: 4% аланина; 6,5% аргинина; 11,3% аспарагиновой кислоты; 1,4% цистеина; 18,5% глутаминовой кислоты; 4,6% глицина; 2,6% гистидина; 4,3% изолейцин; 8,1% лейцин; 6,7% лизина; 1,4% метионина; 5,5% фенилаланин; 5.3% пролин; 6,0% серина; 3,9% тамона; 1,4% триптофана; 4,4% тирозина; 5,6% валина. Для каждой обработки использовали четыре повтора, а экспериментальная установка состояла из 10 чашек Петри. Увеличение длины кукурузного колеоптиля принимали после 48 часов в темноте как меру ауксиноподобной активности.
Эксперимент 2: Испытание на укоренение черенков томатов
Этот биоанализ был проведен для оценки ауксиноподобной активности путем оценки способности гидролизата протеина растительного происхождения «Тренажер» стимулировать образование придаточных корней у черенков томатов.Семена томатов ( S. lycopersicum L. cv. Marmande, SAIS Sementi, Cesena, Italy) стерилизовали поверхность с использованием коммерческого отбеливателя с гипохлоритом натрия в качестве активного ингредиента при 2% в течение 20 мин. После выращивания с достаточным количеством воды семена томатов высевали во влажный вермикулит: субстрат на основе торфа (объемное соотношение 1: 1) в лоток для проращивания. Камера для выращивания была запрограммирована на поддержание 12-часового фотопериода с соответствующим освещением 23 ° C / ночью 18 ° C и относительной влажностью 65%. Интенсивность света на уровне полога составляла 450 мкмоль / м 2 с, обеспечиваемая люминесцентными лампами.Через 35 дней проростки томатов на стадии трех настоящих листьев разрезали у основания стебля. Черенки погружали на 5 мин в раствор, содержащий 6 мл / л гидролизата протеина растительного происхождения «Трейнер», тогда как в качестве контроля использовали дистиллированную воду. Черенки высаживали в прозрачные ящики из оргстекла, содержащие 8 см смоченного перлита. Ящики из оргстекла закрывали, чтобы обеспечить относительную влажность, близкую к насыщению (100%). Лечение было организовано в виде рандомизированного полного блока с тремя повторностями.Каждая экспериментальная установка представляет собой ящик из оргстекла, содержащий 30 черенков.
Через 8 дней после посадки черенки томатов разделяли на побеги и корни. Все ткани растений сушили в сушильном шкафу с принудительной циркуляцией воздуха при 80 ° C в течение 72 ч для определения биомассы. Биомасса побегов равнялась сумме надземных вегетативных частей растений (листья + стебли). Для определения морфологии корней отбирали по пять черенков на экспериментальную единицу. Корни любезно промывали дистиллированной водой, пока в корневой системе не осталось частиц перлита.Определение морфологии корневой системы проводили с помощью WinRHIZO Pro (Regent Instruments Inc., Канада), подключенного к сканеру STD4800. Были получены трехмерные изображения. Были определены следующие характеристики корня: общая длина корня (мм), средний диаметр корня (мм) и общая площадь поверхности корня (см 2 ).
Эксперимент 3: Скорость удлинения стебля карликового гороха
Высокорослый («Олдермен») и карликовый сорт («Заффиро») гороха ( P. sativum L.), приобретенный у Hortus Sementi srl, Лонгиано, Италия, были использованы в этом биопробе.Семена замачивали в дистиллированной воде на 2–3 часа и высевали из расчета три семени на горшки (диаметром 6 см), содержащие коммерческий субстрат на основе торфяного мха (Brill, Gebr. Brill Substrate GmbH & Co., Георгсдорф, Германия) в 300-метровая полиэтиленовая теплица 2 , расположенная на экспериментальной ферме Университета Тусиа, Центральная Италия (42 ° 25 ‘северной широты, 12 ° 08’ восточной долготы). Дневная температура поддерживалась от 18 до 26 ° C. Ночная температура всегда была выше 14 ° C, а относительная влажность колебалась от 50 до 85%.Лечение было организовано в виде рандомизированного полного блока с пятью повторами. Каждая экспериментальная установка состояла из 15 растений. Экспериментальные обработки представляли собой шесть различных растворов: четыре возрастающих концентрации (0,375, 0,75, 1,5 и 3,0 мл / л) гидролизата растительного белка «Трейнер» 100 мг л -1 гибберелловой кислоты (GA 3 ) и деионизированная вода (контроль). Через восемь дней после прорастания каплю испытуемых растворов, содержащих 0,05% раствора ПАВ Твин 20, наносили на побеги как высокого, так и карликового растений гороха.Через 3 дня нанесение раствора повторили. Через две недели после посева измеряли длину стебля у высокорослых и карликовых сортов гороха.
Эксперимент 4: Поглощение азота растениями томатов
Четвертый эксперимент также проводился в тепличных условиях весной 2013 года. Суточная температура поддерживалась между 20 и 30 ° C. Ночная температура всегда была выше 16 ° C, а относительная влажность колебалась от 55 до 85%. S. lycopersicum L. cv. Консоли (SAIS, Seed company, Cesena, Италия) пересаживали 3 апреля в горшки (диаметр 14 см, высота 12 см), содержащие 1.5 л кварцевого песка. Горшки помещали в лотки шириной 16 см и длиной 5 м, с 30 см между горшками и 30 см между лотками, в результате чего плотность растений составляла 11 м -2 . Лечение было организовано в виде рандомизированного полного блока с четырьмя повторностями. Каждая экспериментальная установка состояла из пятнадцати заводов. Лечение состояло из трех концентраций гидролизата растительного белка «Трейнер» (0, 5 или 10 мл, л -1 ). Лечебные растворы применяли трижды в течение цикла выращивания (12, 20 и 26 апреля), используя объем 50 мл / горшок.Растения томатов фертифицировали ежедневно половинным раствором Хогланда. Все использованные химические вещества были аналитической чистоты, а состав питательного раствора был: 8,0 мМ N – NO3-, 1,0 мМ S, 0,7 мМ P, 2,5 мМ K, 3,0 мМ Ca, 0,7 мМ Mg, 1 мМ Nh5 +, 20 мкМ Fe. , 9 мкМ Mn, 0,3 мкМ Cu, 1,6 мкМ Zn, 20 мкМ B и 0,3 мкМ Mo, с электропроводностью (ЕС) 1,2 дСм м -1 . Планирование полива осуществлялось с помощью электронных тензиометров низкого напряжения (LT-Irrometer, Риверсайд, Калифорния, США), которые контролировали полив на основе матричного потенциала субстрата (Rouphael et al., 2004; Руфаэль и Колла, 2005).
В конце эксперимента (через 28 дней после пересадки, 30 апреля) измеритель хлорофилла (SPAD-502, Minolta corporation, Ltd., Осака, Япония) был использован для снятия показаний с полностью раскрытых функциональных листьев. Измерения проводили в центральной точке листочка между средней жилкой и краем листа. Двадцать листьев измеряли случайным образом на делянке и усредняли до единственного значения SPAD для каждой обработки. В тот же день измерений SPAD трансплантаты томата были разделены на стебли, листья и корни.Все ткани растений сушили в сушильном шкафу с принудительной циркуляцией воздуха при 80 ° C в течение 72 ч для определения биомассы. Биомасса побегов равнялась сумме надземных вегетативных частей растений (листья + стебли). Высушенные ткани листа измельчали на мельнице Wiley для прохождения через сито с размером ячеек 20 меш, затем образцы 0,5 г анализировали на содержание азота. Азот определяли по методу Кьельдаля (Bremner, 1965) после минерализации H 2 SO 4 .
Статистический анализ
Во всех экспериментах тесты ANOVA проводились с использованием программного пакета SPSS 10 для Windows (SAS Inc., Кэри, Северная Каролина, США). Тест Дункана с множеством диапазонов был выполнен при P = 0,05 для каждой из измеренных значимых переменных.
Результаты и обсуждение
Ауксиноподобная активность
Хорошо известно, что ауксины стимулируют скорость удлинения стволовых клеток и клеток, вызывают рост корней и апикальное доминирование, задерживают созревание плодов, стимулируют развитие плодов и рост цветковых частей (Zerony and Hall, 1980; Cohen and Bandurski, 1982; Parrado et al. , 2008). Ауксиноподобную активность проверяли, оценивая влияние белкового гидролизата на скорость удлинения колеоптилей кукурузы, что является типичным биологическим анализом ауксинов (Audus, 1972).Результаты эксперимента 1 показали, что тип обработки и концентрация значительно ( P ≤ 0,05) влияли на скорость удлинения колеоптилей кукурузы после 48 ч инкубации в темноте. В этом исследовании применение 1,75 мг / л ИУК привело к увеличению скорости удлинения колеоптилей на 272% по сравнению с контролем. Ответы, индуцированные с точки зрения ауксиноподобной активности (рис. 1), показали, что обработка кукурузы гидролизатом белка вызвала увеличение скорости удлинения колеоптилей по сравнению с контролем дозозависимым образом, сравнимым с эффектами. ИУК, поскольку не наблюдалось значительных различий между четырьмя протестированными концентрациями (например,г, 0,375, 0,75, 1,5 и 3,0 мл / л Trainer) и лечение ИУК (Рисунок 1). Эти результаты продемонстрировали, что сильная ИУК-подобная активность проявлялась при использовании гидролизата протеина растительного происхождения «Тренер». Аналогичным образом, другие коммерческие продукты, полученные в результате ферментативного гидролиза животных белков, содержащих смесь аминокислот и пептидов, вызывают слабую активность, подобную ИУК (Ertani et al., 2009). Более высокая ИУК-подобная активность гидролизата протеина растительного происхождения «Трейнер» может быть объяснена содержанием в нем триптофана (1.4%), который является основным предшественником путей биосинтеза ИУК в растениях. Более того, биологическое действие пептидов также могло способствовать ИУК-подобной активности гидролизата белка растительного происхождения. Многие секреторные и несекреторные пептидные сигналы участвуют в различных аспектах регуляции роста растений, включая рост корней и каллуса, защитные реакции и организацию меристемы (Matsubayashi and Sakagami, 2006; Ertani et al., 2009).
РИСУНОК 1. Скорость удлинения колеоптилей кукурузы в шести различных растворах: четыре возрастающие концентрации (0.375, 0,75, 1,5 и 3,0 мл / л) гидролизата белка растительного происхождения «Trainer» (PH), 1,75 мг / л инодол-3-уксусной кислоты (IAA) и деионизированной воды (контроль). Различные буквы указывают на значительные различия согласно тесту Дункана ( P = 0,05). Значения являются средними для трех повторных образцов.
Ауксиноподобный эффект гидролизата растительного белка «Trainer» также наблюдался в эксперименте по укоренению черенков томатов (эксперимент 2), поскольку обработка черенков 6 мл / л гидролизата растительного белка показала, что укоренение и рост побегов стимулировались (рис. 2).Сухая масса побегов, корней, длина корней и площадь корней были значительно выше на 21, 35, 24 и 26% соответственно у обработанных биостимуляторов, чем у необработанных растений (Таблица 1). Более сильный и обширный корневой аппарат может улучшить эффективность поглощения питательных веществ и воды, что приведет к общему увеличению продуктивности биомассы растений и, как следствие, к повышению урожайности (Zhang et al., 2003; Ertani et al., 2009). В недавнем исследовании Matsumiya и Kubo (2011) идентифицировали пептид, стимулирующий корневые волосы, из деградированного соевого шрота.Продукт деградированного соевого шрота, содержащий пептид, стимулирующий корневые волоски, увеличивал количество корневых волосков у B. oleracea L., Lactuca sativa , Trifolium incarnatum L. и Gypsophila elegans . Наличие корневых волосков является важной частью корня для поглощения и транспортировки питательных веществ (Lauter et al., 1996; Gilroy and Jones, 2000). Мацумиа и Кубо (2011) пришли к выводу, что усиление роста растений деградированными продуктами соевого шрота было вызвано увеличением количества и длины корневых волосков.Анализ ВЭЖХ выявил присутствие пептида, стимулирующего рост корневых волосков, в тестируемом гидролизате протеина растительного происхождения (1 г / л).
РИСУНОК 2. Отрезки томатов, обработанные 0 (A) и 6 мл / л (B) гидролизата растительного белка «Trainer» в конце эксперимента 2.
ТАБЛИЦА 1. Влияние применения гидролизата протеина растительного происхождения на сухой вес побегов и корней, общую длину корней, общую поверхность корней и средний диаметр корней черенков томатов.
Гиббереллиноподобная активность
Гиббереллины (GA 3 ), как и ауксины, способствуют скорости удлинения клеток и действуют как химические посредники, чтобы стимулировать синтез ферментов, таких как α-амилаза и другие гидролитические ферменты, важные во время прорастания проростков, чтобы гарантировать высвобождение накопленных питательных веществ, стимулировать рост листьев, цветение и завязывание плодов (Philipson, 1985; Longman et al., 1986; Parrado et al., 2008). Тест скорости удлинения стебля карликового гороха (эксперимент 3) был использован для анализа гиббереллиноподобной активности растительного гидролизата протеина «Trainer».Обработка карликовых растений гибберелловой кислотой в концентрации 100 мг / л увеличивала длину побегов до аналогичных значений нормальных растений гороха (рис. 3). Применение гидролизата протеина растительного происхождения «Трейнер» во всех дозах значительно увеличивало длину побегов карликовых растений гороха, дефицитных по гиббереллину (GA), в среднем на 33% по сравнению с контрольной обработкой (Рисунок 3), обеспечивая дополнительную свидетельство активности гиббереллина. Эти результаты согласуются с выводами Ertani et al.(2009), которые сообщили, что применение продуктов, полученных из гидролизата белка, значительно увеличивает длину побегов салата по сравнению с применением GA 3 , что указывает на сильную гиббереллиноподобную активность.
РИСУНОК 3. Длина побегов нормальных и карликовых растений гороха, обработанных шестью различными растворами: четыре возрастающие концентрации (0,375, 0,75, 1,5 и 3,0 мл / л) гидролизата растительного белка «Trainer» (PH), 100 мг. / Л гибберелловой кислоты (GA 3 ) и деионизированной воды (контроль). Пунктирными линиями показана длина побегов нормальных и карликовых растений гороха при контрольной обработке. Различные буквы указывают на существенные различия в соответствии с тестом Дункана ( P = 0,05). Значения являются средними для четырех повторных образцов.
Рост и метаболизм азота в растениях томатов
В эксперименте 4 на все измеренные параметры роста томатов значительное влияние оказали применения гидролизата протеина растительного происхождения. Наши данные показали, что две концентрации (5 или 10 мл / л) тестировали усиленный рост трансплантатов томатов, о чем свидетельствует росток (+19.5%), корня (+ 27,5%) и общей сухой биомассы (+ 20,5%, таблица 2). Кроме того, увеличение концентрации гидролизата растительного белка с 0 до 10 мл / л увеличивало содержание хлорофилла (индекс SPAD) и содержание азота в листьях на 15 и 21,5% соответственно. Положительный эффект, оказываемый гидролизатом протеина растительного происхождения «Тренер» на параметры роста растений, происходил за счет стимуляции поглощения и ассимиляции азота. Повышенное содержание азота в листьях может объяснить усиленный фотосинтез и улучшенную транслокацию фотосинтатов в поглотители, которые способствуют увеличению биомассы растений, обработанных гидролизатом белка.Кроме того, усвоение азота растениями включает синтез и преобразование аминокислот за счет восстановления нитратов. За эти процессы ответственны несколько ключевых ферментов (например, нитратредуктаза и глутамин синтетаза). Сообщалось, что внесение гидролизатов в корни может увеличить ассимиляцию азота за счет увеличения активности нитратредуктазы и глутаминсинтетазы, как это ранее наблюдалось в кукурузе (Ertani et al., 2009). Более того, увеличение корневого аппарата в результате применения белкового гидролизата также могло способствовать увеличению поглощения азота растениями томатов.Положительное влияние применения белкового гидролизата на содержание азота в листьях также наблюдалось на некоторых овощных культурах, таких как салат, редис и красный перец (Liu and Lee, 2012; Tsouvaltzis et al., 2014).
ТАБЛИЦА 2. Влияние применения гидролизата протеина растительного происхождения на сухой вес побегов, корней и общую биомассу, индекс SPAD и содержание азота в листьях растений томата.
Заключение
Таким образом, настоящее исследование продемонстрировало биостимулирующее действие гидролизата протеина растительного происхождения «Тренажер» на параметры роста кукурузы, гороха и томатов.Применение гидролизата протеина растительного происхождения «Тренер» вызывало ауксин и гиббереллиноподобную активность, повышало поглощение азота и повышало урожайность. Высокое потребление азота, наблюдаемое у растений, обработанных «Тренажером», можно объяснить разветвленным корневым аппаратом и усилением процесса усвоения азота. Наконец, использование этого продукта может представлять практический интерес для стимулирования роста растений и уменьшения количества азотных удобрений, поскольку он может повысить эффективность использования азота.Однако для понимания механизмов действия биостимуляции на растения необходимы дальнейшие исследования.
Заявление о конфликте интересов
Авторы заявляют, что исследование проводилось при отсутствии каких-либо коммерческих или финансовых отношений, которые могут быть истолкованы как потенциальный конфликт интересов.
Список литературы
Эшмид, Х. Д., Эшмид, Х. Х., Миллер, Г. У. и Хсу, Х. Х. (1986). Внекорневая подкормка растений аминокислотными хелатами .Парк-Ридж, Нью-Джерси: Публикации Нойес.
Аудус, Л. Дж. (1972). Вещества для выращивания растений. Химия и физиология , Vol. 1. Лондон: Леонард Хилл Букс, 533.
.Бремнер, Дж. М. (1965). «Общий азот» в Методы анализа почвы (Агрономическая монография № 9, часть 2), ред. К.А. Блэк, Д.Д. Эванс, И.Л. Уайт, Л.Е. Энсмингер и Ф.Е. Кларк (Мэдисон, Висконсин: Американское агрономическое общество), 1149–1178.
Кавани, Л., Тер Халле, А., Ричард, К.и Ciavatta, C. (2006). Фотосенсибилизирующие свойства удобрений на основе белкового гидролизата. J. Agric. Food Chem. 54, 9160–9167. DOI: 10.1021 / jf802362g
Pubmed Аннотация | Pubmed Полный текст | CrossRef Полный текст
Сердан М., Санчес-Санчес А., Оливер М., Хуарес М. и Санчес-Андреу Дж. Дж. (2009). Влияние некорневых и корневых аппликаций аминокислот на поглощение железа растениями томатов. Acta Hortic. 830, 481–488.
Коэн, Дж. Д.и Бандурски Р.С. (1982). Химия и физиология связанных ауксинов. Annu. Rev. Plant Physiol. 33, 403–430. DOI: 10.1146 / annurev.pp.33.060182.002155
CrossRef Полный текст
Эртани А., Кавани Л., Пиццегелло Д., Бранделлеро Е., Альтиссимо А., Чаватта К. и др. (2009). Биостимулирующая активность двух белковых гидролизатов в росте и азотном обмене проростков кукурузы. J. Plant Nutr. Почвоведение. 172, 237–244 doi: 10.1002 / jpln.200800174
CrossRef Полный текст
Эртани, А., Скьявон, М., Мусколо, А., и Нарди, С. (2013). Биостимулятор люцерны стимулирует кратковременный рост растений Zea mays L., подвергшихся солевому стрессу. Почва растений 364, 145–158. DOI: 10.1007 / s11104-012-1335-z
CrossRef Полный текст
Гилрой С. и Джонс Д. Л. (2000). Хотя форма для функционирования: развитие корневых волосков и поглощение питательных веществ. Trends Plant Sci. 5, 56–60. DOI: 10.1016 / S1360-1385 (99) 01551-4
CrossRef Полный текст
Гурав, Р.Г., и Джадхав, Дж. П. (2013). Новый источник биоудобрения из перьевой биомассы для выращивания бананов. Environ. Sci. Загрязнение. Res. Int. 20, 4532–4539. doi 10.1007 / s11356-012-1405-z
Pubmed Аннотация | Pubmed Полный текст
Ито, Ю., Наканомио, И., Мотос, Х., Ивамото, К., Сава, С., Дохма, Н. и др. (2006). Пептиды Dodeca-CLE как супрессоры дифференцировки стволовых клеток растений. Science 313, 842–845. DOI: 10.1126 / science.1128436
Pubmed Аннотация | Pubmed Полный текст | CrossRef Полный текст
Кауфман, Г.L. III, Kneivel, D. P., and Watschke, T. L. (2007). Влияние биостимулятора на термостойкость, связанную с фотосинтетической способностью, термостабильностью мембран и производством полифенолов райграса многолетнего. Crop Sci. 47, 261–267. DOI: 10.2135 / cropci2006.03.0171
CrossRef Полный текст
Кондо, Т., Сава, С., Киношита, А., Мизуно, С., Какимото, Т., Фукуда, Х., и др. (2006). Растительный пептид, кодируемый CLV3, идентифицированный с помощью анализа in situ MALDI-TOF MS. Science 313, 845–848.DOI: 10.1126 / science.1128439
Pubmed Аннотация | Pubmed Полный текст | CrossRef Полный текст
Kowalczyk, K., Zielony, T., and Gajewski, M. (2008). «Влияние аминоплант и асахи на урожайность и качество салата, выращенного на минеральной вате», в Биостимуляторы в современном сельском хозяйстве. Овощные культуры, изд. Z. T. Dbrowski Monographs Series (Warszawa: Wieś Jutra), 35–43.
Лаутер, Ф. Р., Ниннеманн, О., Бухер, М., Рисмайер, Дж. У. и Фроммер, В. Б.(1996). Предпочтительная экспрессия переносчика аммония и двух предполагаемых переносчиков нитрата в корневых волосках томата. Proc. Natl. Акад. Sci. США 93, 8139–8144. DOI: 10.1073 / pnas.93.15.8139
Pubmed Аннотация | Pubmed Полный текст | CrossRef Полный текст
Лисецка, Ю., Кнафлевски, М., Спижевски, Т., Фрашчак, Б., Калужевич, А., и Кшесински, В. (2011). Влияние гидролизата животного белка на количество и качество дочерних растений клубники cv.«Эльсанта». Acta Sci. Pol. Hortorum Cultus 10, 31–40.
Лю, X.-Q., и Ли, К.-С. (2012). «Влияние смешанных аминокислот на рост сельскохозяйственных культур», в Agricultural Science , ed. Г. Афлакпуи (Риека: InTech Europe Publisher), 119–158.
Лонгман, К. А., Дик, Дж. Мак. П., Магглстон М. и Смит Р. И. (1986). Влияние гиббереллина A4 / 7 и кольцевания коры на зарождение колбочек в зрелых трансплантатах Picea sitchensis . Tree Physiol. 1, 101–113.DOI: 10.1093 / treephys / 1.1.101
CrossRef Полный текст
Мацумиа Ю., Кубо М. (2011). «Пептид сои: новый пептид из соевых бобов, способствующий росту растений», в Soybean and Nutrition , ed. Х. Эль-Шеми (Риека: InTech Europe Publisher), 215–230. DOI: 10.5772 / 19132
CrossRef Полный текст
Моралес-Паян, Дж. П., и Столл, В. М. (2003). Папайя ( Carica papaya ) — реакция на некорневую обработку органическими комплексами пептидов и аминокислот. Proc. Fla. State Hort. Soc. 116, 30–32.
Паррадо, Дж., Баутиста, Дж., Ромеро, Э. Дж., Гарсия-Мартинес, А. М., Фриаса, В., и Техада, М. (2008). Производство ферментативного экстракта рожкового дерева: возможное использование в качестве биоудобрения. Биоресурсы. Technol. 99, 2312–2318. DOI: 10.1016 / j.biortech.2007.05.029
Pubmed Аннотация | Pubmed Полный текст | CrossRef Полный текст
Паррадо, Дж., Эскудеро-Гилете, М. Л., Фриаса, В., Гарсия-Мартинес, А., Гонсалес-Мирет, М.Л., Баутиста, Дж. Д. и др. (2007). Ферментативный растительный экстракт с биологически активными компонентами: влияние удобрений на цвет и антоцианы красного винограда. J. Sci. Продовольственное сельское хозяйство. 87, 2310–2318. DOI: 10.1002 / jsfa.2989
CrossRef Полный текст
Филипсон, Дж. Дж. (1985). Стимуляция цветения ели ситкинской крупной, выращиваемой в полевых условиях, путем опоясания и кормления гиббереллином А4 / 7. банка. J. Forest Res. 15, 166–170. DOI: 10.1139 / x85-027
CrossRef Полный текст
Руфаэль, Ю., и Колла, Г. (2005). Радиационная эффективность и эффективность использования воды кабачками из кабачков в теплице в зависимости от различных климатических параметров. Eur. J. Agron. 23, 183–194. DOI: 10.1016 / j.eja.2004.10.003
CrossRef Полный текст
Руфаэль Ю., Колла Г., Баттистелли А., Москателло С., Пройетти С. и Ри Э. (2004). Урожайность, потребность в воде, потребление питательных веществ и качество плодов кабачков, выращенных в почве и закрытой беспочвенной культуре. J. Hortic. Sci. Biotechnol. 79, 423–430.
Райан К. А., Пирс Г., Шеер Дж. И Моура Д. С. (2002). Полипептидные гормоны. Растительная клетка 14, S251 – S264. doi 10.1105 / tpc.010484
Цувальцис П., Кукунарас А. и Сиомос А. С. (2014). Применение аминокислот улучшает однородность посевов салата и подавляет накопление нитратов, вызванное дополнительным внесением неорганических азотных удобрений. Внутр. J. Agric. Биол. 16, 951–955.
Зерони, М., и Холл, М.А. (1980). «Молекулярные эффекты гормонального лечения на ткани», In Hormonal Regulation of Development, ed. И. Дж. Макмиллан (Берлин: Springer-Verlag). DOI: 10.1007 / 978-3-642-67704-5_7
CrossRef Полный текст
Чжан X., Эрвин Э. Х. и Шмидт Р. Э. (2003). Воздействие жидкого применения экстракта морских водорослей и гуминовой кислоты на ползучую полевицу ( Agrostis palustris Huds . A.). J. Am. Soc. Hort. Sci. 128, 492–496.
Биостимулятор корня с биологическим фунгицидом
Автор : Кайл Бабики, сертифицированный лесовод WI-0889A
Размещено : 2019 | Зима
Если вы получаете этот информационный бюллетень, вы также, вероятно, получите письмо с ежегодным рецептом по уходу за деревьями от вашего сертифицированного лесовода.Вы можете заметить новую рекомендацию в своем рецепте по уходу за деревом. Эта новая услуга называется «Корневой биостимулятор с биологическим фунгицидом».
“ Почему корневой биостимулятор с биологическим фунгицидом поможет моему дереву? ”- эта смесь продуктов содержит натуральную смесь макроэлементов и микроэлементов для оптимального здоровья деревьев. Главный ингредиент — бактерии, которые помогают растениям активировать естественную сопротивляемость различным заболеваниям. Это также помогает увеличить биоразнообразие почвы для более здорового баланса почвы.Бактерии могут также активировать гормональную реакцию растений, которая вызывает «оживление» роста после нанесения. Наконец, смесь также включает в себя естественные почвенные добавки, способствующие росту корней.
« От каких заболеваний защитит это лечение? ”- Продукт предназначен в первую очередь для лечения заболеваний корневой гнили и грибков, переносимых почвой. К сожалению, эти болезни очень распространены на жилых почвах из-за последствий строительства и городского озеленения. Эти болезни часто существуют в вашей почве задолго до того, как какие-либо заметные симптомы появятся на ваших деревьях или кустах.Эта обработка также может укрепить естественные защитные системы растений. Это поможет вашему дереву или кустарнику быть более устойчивым к дополнительным инфекциям. Например, хотя продукт сам по себе не защищает от некоторых болезней листвы, он может помочь дереву стать более устойчивым к ним. Приложение может стать отличным дополнением к процедурам, которые вы, возможно, уже используете в своем ландшафте.
“ Как применяется этот продукт? »- Наш« Биостимулятор корней с биологическим фунгицидом »применяется в виде жидкой почвенной инъекции.Арборист использует почвенный зонд, чтобы ввести смесь прямо в почву, где плотность корней наиболее высока. В некоторых случаях смесь можно наносить местно на поверхность почвы и просачиваться в корневую зону.
« Как мне узнать, подходят ли мои деревья для этой услуги? »- Вот для чего мы здесь! Хотя никогда не бывает универсальной волшебной серебряной пули для ухода за деревьями, «Корневой биостимулятор с биологическим фунгицидом» — это вариант, который может дополнить многие планы лечения.Не стесняйтесь обращаться к нам с просьбой навестить вас и ваши деревья. Наши сертифицированные арбористы будут рады оценить ваши деревья и кустарники и сообщить, может ли эта услуга принести пользу вашему ландшафту.
Влияние биостимуляторов растений на здоровье корней и растений, а также на микробиом ризосферы цитрусовых в условиях, эндемичных по хуанлунбингу
Абд Эль-Разек Э., Салех MMS (2012) Повышение урожайности и качества плодов персикового дерева Флориды с использованием листвы и почвы аппликации аминокислот.Ближневосточный журнал научных исследований 12: 1165–1172. https://doi.org/10.5829/idosi.mejsr.2012.12.8.1861
CAS Статья Google ученый
Анджелкович М., Ван Камп Дж., Де Меуленаер Б., Депамелаер Дж., Сокачиу С., Верлоо М., Верхе Р. (2006) Свойства хелатирования железа фенольных кислот, содержащих катехоловые и галлоильные группы. Food Chem 98: 23–31. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2005.05.044
CAS Статья Google ученый
Apprill A, McNally S, Parsons R, Weber L (2015) Незначительная переработка праймера гена рРНК 806R области V4 SSU рРНК 806R значительно увеличивает обнаружение бактериопланктона SAR11.Aquat Microb Ecol 75: 129–137. https://doi.org/10.3354/ame0175
Статья Google ученый
Асланташ Р., Чакмакчи Р., Шахин Ф. (2007) Влияние ризобактерий, способствующих росту растений, на рост молодых яблонь и урожайность плодов в условиях сада. Sci Hortic 111: 371–377. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2006.12.016
Статья Google ученый
Bailly A, Weisskopf L (2012) Модулирующее влияние бактериальных летучих веществ на рост растений, текущие знания и будущие проблемы.Поведение сигнала растения 7: 79–85
CAS Статья Google ученый
Battacharyya D, Babgohari MZ, Rathor P, Prithiviraj B (2015) Экстракты морских водорослей как биостимуляторы в садоводстве. Sci Hortic 196: 39–48. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2015.09.012
CAS Статья Google ученый
Bender SF, Wagg C, van der Heijden MGA (2016) Подземная революция: биоразнообразие и экологическая инженерия почвы для устойчивости сельского хозяйства.Тенденции Ecol Evol 31: 440–452. https://doi.org/10.1016/j.tree.2016.02.016
Статья PubMed PubMed Central Google ученый
Берендсен Р.Л., Питерс CMJ, Баккер PAHM (2012) Микробиом ризосферы и здоровье растений. Trends Plant Sci 17: 478–486. https://doi.org/10.1016/j.tplants.2012.04.001
CAS Статья PubMed Google ученый
Bist V, Niranjan A, Ranjan M, Lehri A, Seem K, Srivastava S (2020) Солюбилизирующая кремний среда и ее значение для характеристики бактерий для смягчения биотического стресса.Фронт завод науки 11:28. https://doi.org/10.3389/fpls.2020.00028
Статья PubMed PubMed Central Google ученый
Бокулич Н.А., Kaehler BD, Rideout JR, Dillon M, Bolyen E, Knight R, Huttley GA, Gregory Caporaso J (2018) Оптимизация таксономической классификации последовательностей ампликонов маркерных генов с помощью подключаемого модуля QIIME 2-классификатора функций. Микробиом 6:90. https://doi.org/10.1186/s40168-018-0470-z
Статья PubMed PubMed Central Google ученый
Бове Дж. М. (2006) Хуанлунбин: деструктивная, недавно возникшая столетняя болезнь цитрусовых.Дж. Растение Патол 88: 7–37. https://doi.org/10.4454/jpp.v88i1.828
Статья Google ученый
Brown P, Saa S (2015) Биостимуляторы в сельском хозяйстве. Передний. Plant Sci 6: 671
Google ученый
Bulgari R, Cocetta G, Trivellini A, Vernieri P, Ferrante A (2015) Биостимуляторы и реакции сельскохозяйственных культур: обзор. Biol Agric Hortic 31: 1–17. https://doi.org/10.1080/01448765.2014.964649
Артикул Google ученый
Canellas LP, Olivares FL, Aguiar NO, Jones DL, Nebbioso A, Mazzei P, Piccolo A (2015) Гуминовые и фульвокислоты как биостимуляторы в садоводстве. Sci Hortic 196: 15–27. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2015.09.013
CAS Статья Google ученый
Cao J, Cheng C, Yang J, Wang Q (2015) Патогенетическая инфекция определяет характер резорбции питательных веществ у цитрусовых.Sci Rep 5: 14675. https://doi.org/10.1038/srep14675
CAS Статья PubMed PubMed Central Google ученый
Chapman HD (1968) Минеральное питание цитрусовых. В: Reuther W, Batchelor LD, Webber HJ (eds) Цитрусовая промышленность: анатомия, физиология, генетика и воспроизводство. Калифорнийский университет, Отдел сельскохозяйственных наук, Окленд, Калифорния, США, стр. 127–289
Google ученый
Чавес М.Г., Сильва Г.Г., Россетто Р., Эдвардс Р.А., Цай С.М., Наваррете А.А. (2019) Подгруппы ацидобактерий и их метаболический потенциал для разложения углерода в почве сахарного тростника с добавлением барды и азотных удобрений.Front Microbiol 10: 1680. https://doi.org/10.3389/fmicb.2019.01680
Статья PubMed PubMed Central Google ученый
Chong J, Liu P, Zhou G, Xia J (2020) Использование MicrobiomeAnalyst для комплексного статистического, функционального и метаанализа данных микробиома. Nat Protoc 15: 799–821. https://doi.org/10.1038/s41596-019-0264-1
CAS Статья PubMed Google ученый
Clemensson-Lindell A (1994) Хлорид трифенилтетразолия как индикатор жизнеспособности тонких корней и экологического стресса в насаждениях хвойных лесов: применение и ограничения.Почва для растений 159: 297–300. https://doi.org/10.1007/BF00009293
CAS Статья Google ученый
Colla G, Rouphael Y (2015) Биостимуляторы в садоводстве. Sci Hortic 196: 1-2. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2015.10.044
Статья Google ученый
Colla G, Hoagland L, Ruzzi M, Cardarelli M, Bonini P, Canaguier R, Rouphael Y (2017) Биостимулирующее действие гидролизатов белка: выяснение их влияния на физиологию растений и микробиом.Front Plant Sci 8: 2202. https://doi.org/10.3389/fpls.2017.02202
Статья PubMed PubMed Central Google ученый
da Graça JV, Douhan GW, Halbert SE, Keremane ML, Lee RF, Vidalakis G, Zhao H (2016) Huanglongbing: обзор сложной патосистемы, опустошающей цитрусовые в мире. Дж. Интегр Биол Растений 58: 373–387. https://doi.org/10.1111/jipb.12437
Статья PubMed Google ученый
Додд И.С., Зиновкина Н.Ю., Сафронова В.И., Белимов А.А. (2010) Ризобактериальное опосредование гормонального статуса растений.Энн Аппл Биол 157: 361–379. https://doi.org/10.1111/j.1744-7348.2010.00439.x
CAS Статья Google ученый
Донг Л., Кордова-Крейлос А.Л., Ян Дж., Юань Х., Скоу К.М. (2009) Гуминовые кислоты смягчают действие мочевины на окислители аммиака в почве и потенциальную нитрификацию. Почва Биол Биохим 41: 1612–1621. https://doi.org/10.1016/j.soilbio.2009.04.023
CAS Статья PubMed PubMed Central Google ученый
Донохью С.Дж., Ахо Д.В. (1992) Определение P, K, Ca, Mg, Mn, Fe, Al, B, Cu и Zn в растительной ткани с помощью эмиссионной спектроскопии с индуктивно связанной плазмой (ICP).В: Plank CO (ed) Эталонные процедуры анализа растений для Южного региона США, Бюллетень Southern Cooperative Series 368. Сельскохозяйственная экспериментальная станция Джорджии, Афины, Джорджия, США, стр. 37–40
Google ученый
Дробек М., Фрук М., Цибульска Дж. (2020) Биостимуляторы растений: важность качества и урожайности садовых культур и повышение устойчивости растений к абиотическому стрессу — обзор. Агрономия 9: 335.https://doi.org/10.3390/agronomy
35CAS Статья Google ученый
du Jardin P (2015) Биостимуляторы растений: определение, концепция, основные категории и нормативы. Sci Hortic 196: 3–14. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2015.09.021
CAS Статья Google ученый
Фати М.А., Габр М.А., Эль-Шалл С.А. (2010) Влияние обработки гуминовой кислотой на рост, урожайность и качество плодов абрикосов.N Y Sci J 3: 109–115
Google ученый
Fatma KMS, Morsey MM, Thanaa SMM (2015) Влияние опрыскивающего дрожжевого экстракта и гуминовой кислоты на стадию созревания и сохранность плодов абрикоса Canino. Int J Chem Tech Res 8: 530–543
CAS Google ученый
Фернандес-Эскобар Р., Бенллох М., Барранко Д., Дуэнас А., Гутеррес Ганан Дж. А. (1996) Реакция оливковых деревьев на некорневую подкормку гуминовых веществ, извлеченных из леонардита.Sci Hortic 66: 191–200. https://doi.org/10.1016/S0304-4238(96)00914-4
Статья Google ученый
Fornes F, Sanchez-Perales M, Guardiola JL (1993) Влияние экстракта морских водорослей на созревание цитрусовых. Int Symp Qual Fruit Veg 379: 75–82. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.1995.379.6
Статья Google ученый
Гардес М., Брунс Т.Д. (1993) Праймеры ITS с повышенной специфичностью в отношении базидиомицетов — применение для идентификации микоризы и ржавчины.Мол Экол 2: 113–118. https://doi.org/10.1111/j.1365-294x.1993.tb00005.x
CAS Статья PubMed Google ученый
Gottwald TR, Graham JH, Schubert TS (2002) Язва цитрусовых: возбудитель и его влияние. Прогресс здоровья растений. http://plantmanagementnetwork.org/pub/php/review/citruscanker. По состоянию на 15 декабря 2020 г.
Gottwald TR, da Graça JV, Bassanezi RB (2007) Citrus Huanglongbing: возбудитель и его влияние.Прогресс здоровья растений. https://www.plantmanagementnetwork.org/pub/php/review/2007/huanglongbing. По состоянию на 15 декабря 2020 г.
Graham JH, Johnson EG, Gottwald TR, Irey MS (2013) Предсимптомное снижение волокнистости корней цитрусовых деревьев, вызванное Huanglongbing, и потенциальное взаимодействие с Phytophthora spp. Завод Dis 97: 1195–1199. https://doi.org/10.1094/pdis-01-13-0024-re
CAS Статья PubMed Google ученый
Hagagg LF, Shahin MFM, Merwad MA, Khalil FH, El-Hady ES (2013) Улучшение качества и количества плодов оливковых деревьев «Аггизи» путем применения гуминовой кислоты на стадиях полного цветения и завязывания плодов.Middle East J Agric Res 2: 44–50
Google ученый
Jindo K, Olivares FL, Malcher DJ, da P, Sánchez-Monedero MA, Kempenaar C, Canellas LP, (2020) От лаборатории к полю: роль гуминовых веществ в условиях открытого грунта и теплицы в качестве биостимулятора и биоконтроля агент. Front Plant Sci 11: 426. https://doi.org/10.3389/fpls.2020.00426
Статья PubMed PubMed Central Google ученый
Johnson EG, Wu J, Bright DB, Graham JH (2014) Ассоциация корней ‘ Candidatus liberibacter asiaticus ‘, но не закупорка флоэмы с потерей корней на huanglongbing — деревьях, пораженных до появления симптомов листвы .Растение Патол 63: 290–298. https://doi.org/10.1111/ppa.12109
Статья Google ученый
Kamel HM (2014) Влияние чесночного масла, экстракта морских водорослей и имазалила на лежкость плодов апельсина Валенсия при хранении в холодильнике. J Hortic Sci Ornam Plants 6: 116–125. https://doi.org/10.5829/idosi.jhsop.2014.6.3.1145
Статья Google ученый
Kumar P, Sharma N, Sharma S, Gupta R (2020) Стехиометрия ризосферы, урожай плодов, качественные характеристики и реакция роста на поправки к трансплантату PGPR у клубники ( Fragaria × ananassa Duch.) растет на соляризованных почвах. Sci Hortic 265: 109215. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2020.109215
CAS Статья Google ученый
Li RX, Cai F, Pang G, Shen QR, Li R, Chen W. (2015) Солюбилизация фосфатов и микроэлементов с помощью Trichoderma harzianum и его связь с стимулированием роста растений томата. PLoS One 10: e0130081. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0130081
CAS Статья PubMed PubMed Central Google ученый
Li Y, Fang F, Wei J, Wu X, Cui R, Li G, Zheng F, Tan D (2019) Гуминовые кислотные удобрения улучшили свойства почвы и микробное разнообразие почвы при непрерывном выращивании арахиса: трехлетний эксперимент .Sci Rep 9: 12014. https://doi.org/10.1038/s41598-019-48620-4
CAS Статья PubMed PubMed Central Google ученый
Mattos DJ, Kadyampakeni DM, Oliver AQ, Boaretto RM, Morgan KT, Quaggio JA (2020) Взаимодействие почвы и питания. В: Talon M, Caruso M, Gmitter FF (ред.) Род цитрусовых. Эльзевир, Даксфорд, Великобритания, стр. 311–331
Глава Google ученый
McMurdie PJ, Holmes S (2013) phyloseq: пакет R для воспроизводимого интерактивного анализа и графики данных переписи микробиома.PLoS One 8: e61217. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0061217
CAS Статья PubMed PubMed Central Google ученый
McMurdie PJ, Holmes S (2014) Не выбрасывайте, не хотите: почему разрежение данных микробиома недопустимо. PLoS Comput Biol 10: e1003531. https://doi.org/10.1371/journal.pcbi.1003531
CAS Статья PubMed PubMed Central Google ученый
Mercier L, Lafitte C, Borderies G, Briand X, Esquerré-Tugayé MT, Fournier J (2001) Полисахариды водорослей каррагинаны могут действовать как активатор защиты растений.Новый Фитол. 149: 43–51. https://doi.org/10.1046/j.1469-8137.2001.00011.x
CAS Статья PubMed Google ученый
Morgan KT, Kadyampakeni DM (2020) Питание цитрусовых деревьев Флориды. Институт пищевых продуктов и сельскохозяйственных наук Университета Флориды, Флорида, США
Google ученый
Morgan KT, Rouse RE, Ebel RC (2016) Внекорневая подкормка основных питательных веществ для роста и урожайности сладкого апельсина «Валенсия», инфицированного huanglongbing.Hort Sci 51: 1482–1493. https://doi.org/10.21273/HORTSCI11026-16
CAS Статья Google ученый
Милаварапу Р., Харрис В., Хохмут Г., 2016. Сельскохозяйственные почвы Флориды. https://edis.ifas.ufl.edu/ss655. По состоянию на 15 декабря 2020 г.
Naether A, Foesel BU, Naegele V, Wüst PK, Weinert J, Bonkowski M, Alt F, Oealmann Y, Polle A, Lohaus G, Gockel S, Hemp A, Kalko EKV, Linsenmair KE, Pfeiffer S, Renner S, Schöning I., Weisser WW, Wells K, Fischer M, Overmann J, Friedrich MW (2012) Факторы окружающей среды влияют на сообщества ацидобактерий ниже уровня подгруппы на пастбищах и лесных почвах.Appl Environ Microbiol 78: 7398–7406. https://doi.org/10.1128/AEM.01325-12
CAS Статья PubMed PubMed Central Google ученый
Наваррете А.А., Каннаван Ф.С., Такетани Р.Г., Цай С.М. (2010) Молекулярный обзор разнообразия микробных сообществ в различных модельных системах сельского хозяйства Амазонки. Разнообразие 2: 787–809. https://doi.org/10.3390/d2050787
CAS Статья Google ученый
Норрис CE, Congreves KA (2018) Альтернативные методы управления улучшают показатели здоровья почвы в системах интенсивного овощеводства: обзор.Front Environ Sci 6:50. https://doi.org/10.3389/fenvs.2018.00050
Статья Google ученый
Нуццо А, Сатпуте А, Альбрехт У., Штраус С.Л. (2020) Влияние почвенных микробных добавок на микробиом ризосферы томатов и рост растений в полевой почве. Microb Ecol 80: 398-409. https://doi.org/10.1007/s00248-020-01497-7
CAS Статья PubMed Google ученый
Obreza TA, Zekri M, Hanlon EA (2020) Тестирование тканей почвы и листьев.В: Питание цитрусовых деревьев Флориды, Расширение МФСА Флоридского университета .. https://edis.ifas.ufl.edu/ss671. По состоянию на 15 декабря 2020 г.
Омар AEDK (2014) Использование экстракта морских водорослей в качестве многообещающей послеуборочной обработки апельсина Вашингтон Пупел ( Citrus sinensis Osbeck). Biol Agric Hortic 30: 198–210. https://doi.org/10.1080/01448765.2014.8
Статья Google ученый
Орр Р., Нельсон П.Н. (2018) Влияние абиотических свойств почвы на фузариозное увядание, с упором на бананы.Appl Soil Ecol 132: 20–33. https://doi.org/10.1016/j.apsoil.2018.06.019
Статья Google ученый
Overvoorde P, Pukaki H, Beeckman E (2011) Ауксиновый контроль развития корневой системы. Колд Спринг Харб Persp Biol 2: a001537. https://doi.org/10.1101/cshperspect.a001537
CAS Статья Google ученый
Padhi EMT, Maharaj N, Lim SY, Mishchuk DO, Chin E, Godfrey K, Foster E, Polek M, Leveau JHJ, Slupsky CM (2019) Сигнатуры метаболома и микробиома в корнях цитрусовых, затронутых хуанглонгингом.Фитопатология 109: 2022–2032. https://doi.org/10.1094/PHYTO-03-19-0103-R
CAS Статья PubMed Google ученый
Papenfus HB, Kulkarni MG, Stirk WA, Finnie JF, Van Staden J (2013) Влияние коммерческого экстракта морских водорослей (Kelpak®) и полиаминов на лишенные питательных веществ (N, P и K) проростки окры. Sci Hortic 151: 142–146. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2012.12.022
CAS Статья Google ученый
Podbielska M, Kus-Li Skiewicz M, Jagusztyn B, Piechowicz B, Sadło S, Słowik-Borowiec M, Twaru zek M, Szpyrka E (2020) Влияние Bacillus subtilis subtilis и derradicumhoder при лабораторных и полевых исследованиях.Молекулы 25: 1421. https://doi.org/10.3390/molecules25061421
CAS Статья PubMed Central Google ученый
Puglisi E, Pascazio S, Suciu N, Cattani I, Fait G, Spaccini R, Crecchio C, Piccolo A, Trevisan M (2013) Микробное разнообразие ризосферы под влиянием поправок на гуминовые вещества и химического состава ризодепозитов. J Geochem Explor 129: 82–94. https://doi.org/10.1016/j.gexplo.2012.10.006
CAS Статья Google ученый
Pustika AB, Subandiyah S, Holford P, Beattie GAC, Iwanami T, Masaoka Y (2008) Взаимодействие между питательными веществами растений и выражением симптомов у мандариновых деревьев, инфицированных болезнью Хуанлунбин.Примечания к работе Aust Plant Dis Notes 3: 112–115. https://doi.org/10.1007/BF03211261
CAS Статья Google ученый
Quast C, Pruesse E, Yilmaz P, Gerken J, Schweer T, Yarza P, Peplies J, Glöckner FO (2013) Проект базы данных генов рибосомной РНК SILVA: улучшенная обработка данных и веб-инструменты. Нуклеиновые кислоты Res 41: D590. https://doi.org/10.1093/nar/gks1219
CAS Статья PubMed Google ученый
Radoglou K, Cabral R, Repo T, Hasanagas N, Sutinen ML, Waisel Y (2007) Оценка утечки корней как метод оценки жизнеспособности корней.Завод Биосист 141: 443–459. https://doi.org/10.1080/11263500701626143
Статья Google ученый
Ranjard L, Dequiedt S, Chemidlin PBN, Thioulouse J, Saby NPA, Maron LPA, Morin FER, Bispo A, Jolivet C, Arrouays D, Lemanceau P (2013) Оборот бактериального разнообразия почвы, обусловленный широкомасштабными экологическими факторами. неоднородность. Нац Коммуна 4: 1434. https://doi.org/10.1038/ncomms2431
CAS Статья PubMed Google ученый
Rashid MI, Mujawar LH, Shahzad T., Almeelbi T., Ismail IMI, Oves M (2016) Бактерии и грибы могут способствовать биодоступности питательных веществ и формированию агрегатов в деградированных почвах.Microbiol Res 183: 26–41. https://doi.org/10.1016/j.micres.2015.11.007
CAS Статья PubMed Google ученый
Ricci M, Tilbury L, Daridon B, Sukalac K (2019) Общие принципы обоснования заявлений о биостимуляторах растений. Front Plant Sci 10: 494. https://doi.org/10.3389/fpls.2019.00494
Статья PubMed PubMed Central Google ученый
Riera N, Handique U, Zhang Y, Dewdney MM, Wang N (2017) Характеристика полезных бактерий, продуцирующих противомикробные препараты, выделенных из побегов цитрусовых деревьев Huanglongbing.Фронтальный микробиол 8: 2415. https://doi.org/10.3389/fmicb.2017.02415
Статья PubMed PubMed Central Google ученый
Rouphael Y, Colla G (2018) Синергетическое биостимулирующее действие: разработка нового поколения биостимуляторов растений для устойчивого сельского хозяйства. Front Plant Sci 9: 1655. https://doi.org/10.3389/fpls.2018.01655
Статья PubMed PubMed Central Google ученый
Rouphael Y, Colla G (2020) От редакции: биостимуляторы в сельском хозяйстве.Фронт Завод Науки 11:40. https://doi.org/10.3389/fpls.2020.00040
Статья PubMed PubMed Central Google ученый
Руцци М., Арока Р. (2015) Ризобактерии, способствующие росту растений, действуют как биостимуляторы в садоводстве. Sci Hort 196: 124–134. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2015.08.042
CAS Статья Google ученый
Селламуту К.М., Говиндасвами М. (2003) Влияние удобрений и гуминовой кислоты на ризосферные микроорганизмы и ферменты почвы на ранней стадии роста сахарного тростника.Sugar Tech 5: 273–277. https://doi.org/10.1007/BF02942484
CAS Статья Google ученый
Шен В., Севаллос-Севаллос Дж. М., да Роча ООН, Аревало HA, Стэнсли П.А., Робертс П.Д., ван Брюгген AHC (2013) Связь между питанием растений, гормонами, применением инсектицидов, бактериальными эндофитами и Candidatus liberacter Значения Ct у цитрусовых деревьев, зараженных Huanglongbing. Eur J Plant Pathol 137: 727–742.https://doi.org/10.1007/s10658-013-0283-7
CAS Статья Google ученый
Смилкова М., Смилек Дж., Калина М., Ключакова М., Пекар М., Седлачек П. (2019) Простой метод оценки кутикулярной диффузии биостимуляторов гуминовых кислот. Растительные методы 15: 1–11. https://doi.org/10.1186/s13007-019-0469-x
CAS Статья Google ученый
Song GC, Ryu CM (2013) Два летучих органических соединения запускают самозащиту растений от бактериального патогена и сосущих насекомых в огурцах в условиях открытого поля.Int J Mol Sci 14: 9803–9819
Статья Google ученый
Soppelsa S, Kelderer M, Casera C, Bassi M, Robatscher P, Andreotti C (2018) Использование биостимуляторов для органического производства яблок: влияние на рост деревьев, урожайность и качество плодов при сборе урожая и во время хранения. Front Plant Sci 9: 1342. https://doi.org/10.3389/fpls.2018.01342
Статья PubMed PubMed Central Google ученый
Spann TM, Little HA (2011) Применение коммерческого экстракта бурых морских водорослей Ascophyllum nodosum повышает устойчивость к засухе у выращиваемых в контейнерах деревьев питомника сладкого апельсина «хамлин».Hort. Sci 46: 577–582. https://doi.org/10.21273/HORTSCI.46.4.577
Статья Google ученый
Spann TM, Schumann AW (2009) Роль питательных веществ для растений в развитии болезней с акцентом на цитрусовые и Huanglongbing. Proc Fla State Hort Soc 122: 169–171
Google ученый
Стэнсли PA, Arevalo HA, Qureshi JA, Jones MM, Hendricks K, Roberts PD, Roka FM (2014) Борьба с переносчиками и некорневое питание для поддержания экономической устойчивости плодоношения цитрусовых в рощах Флориды, пораженных хуанглонгингом.Pest Manag Sci 70: 415–426. https://doi.org/10.1002/ps.3577
CAS Статья PubMed Google ученый
Stirk WA, Tarkowská D, Turečová V, Strnad M, van Staden J (2014) Абсцизовая кислота, гиббереллины и брассиностероиды в Kelpak®, коммерческом экстракте морских водорослей, полученном из Ecklonia maxima. J Appl Phycol 26: 561–567. https://doi.org/10.1007/s10811-013-0062-z
CAS Статья Google ученый
Sturite I, Henriksen TM, Breland TA (2005) Различение метаболически активных и неактивных корней путем комбинированного окрашивания хлоридом 2,3,5-трифенилтетразолия и анализа цвета изображения.Почва для растений 271: 75–82. https://doi.org/10.1007/s11104-004-2027-0
CAS Статья Google ученый
Сурьяди Ю., Сусиловати Д. Н., Фаузия Ф. (2019) Управление болезнями растений с помощью PGPR-опосредованной индуцированной устойчивости с особым упором на посевы чая и риса. В: Сайед Р.З. (ред.) Ризобактерии, способствующие росту растений, для устойчивого управления стрессом. Спрингер, Сингапур, стр. 65–110
Глава Google ученый
Tanou G, Ziogas V, Molassiotis A (2017) Внекорневая подкормка, биостимуляторы и динамика в физиологии фруктовых деревьев: новый взгляд на старую тему.Front Plant Sci 8:75. https://doi.org/10.3389/fpls.2017.00075
Статья PubMed PubMed Central Google ученый
Tedersoo L, Sánchez-Ramírez S, Kõljalg U, Bahram M, Döring M, Schigel D, May T., Ryberg M, Abarenkov K (2018) Классификация грибов высокого уровня и инструмент для эволюционного экологического анализа. Fungal Divers 90: 135–159. https://doi.org/10.1007/s13225-018-0401-0
Статья Google ученый
Техада М., Родригес-Моргадо Б., Гомес И., Франко-Андреу Л., Бенитес С., Паррадо Дж. (2016) Использование биоудобрений, полученных из осадка сточных вод, на урожай кукурузы.Eur J Agron 78: 13–19. https://doi.org/10.1016/j.eja.2016.04.014
Статья Google ученый
Ter Braak CJF, Smilauer P (2002) Справочное руководство CANOCO и руководство пользователя CanoDraw для Windows: программное обеспечение для канонического посвящения в сообщество. Биометрис Вагенинген
Google ученый
Thorup-Kristensen K, Kirkegaard J (2016) Ограничения производительности и эффективности сельского хозяйства на основе корневой системы: контекст сельскохозяйственных систем.Энн Бот 118: 573–592. https://doi.org/10.1093/aob/mcw122
Статья PubMed PubMed Central Google ученый
Триведи П., Спанн Т., Ван Н. (2011) Выделение и характеристика полезных бактерий, связанных с корнями цитрусовых во Флориде. Microb Ecol 62: 324–336. https://doi.org/10.1007/s00248-011-9822-y
CAS Статья PubMed Google ученый
Триведи П., Хе З., Ван Ностранд Дж. Д., Альбриго Г., Чжоу Дж., Ван Н. (2012) Хуанлунбин изменяет структуру и функциональное разнообразие микробных сообществ, связанных с ризосферой цитрусовых.ISME J 6: 363–383. https://doi.org/10.1038/ismej.2011.100
CAS Статья PubMed Google ученый
Vacheron J, Desbrosses G, Bouffaud ML, Touraine B, Moënne-Loccoz Y, Muller D, Legendre L, Wisniewski-Dyé F, Prigent-Combaret C (2013) Ризобактерии, способствующие росту растений и функционирование корневой системы. Front Plant Sci 4: 356. https://doi.org/10.3389/fpls.2013.00356
Статья PubMed PubMed Central Google ученый
Vandenkoornhuyse P, Quaiser A, Duhamel M, Le Van A, Dufresne A (2015) Важность микробиома холобионта растения.Новый Фитол. 206: 1196–1206. https://doi.org/10.1111/nph.13312
Статья PubMed Google ученый
Wang Z, Li Y, Zhuang L, Yu Y, Liu J, Zhang L, Gao Z, Wu Y, Gao W, Ding GG, Wang Q (2019) Ризосферный консорциум Bacillus subtilis и Trichoderma harzianum подавляет паршу картофеля и увеличивает урожайность. Comput Struct Biotechnol J 17: 645–653. https://doi.org/10.1016/j.csbj.2019.05.003
Артикул PubMed PubMed Central Google ученый
Woo SL, Pepe O (2018) Консорциумы микробов: многообещающие пробиотики в качестве биостимуляторов растений для устойчивого сельского хозяйства. Front Plant Sci 9: 1801. https://doi.org/10.3389/fpls.2018.01801
Статья PubMed PubMed Central Google ученый
Wu Z, Liu Q, Li Z, Li Z, Cheng W, Sun J, Guo Z, Li Y, Zhou J, Meng D, Li H, Lei P, Yin H (2018) Факторы окружающей среды, формирующие разнообразие бактериальных сообществ, способствующих производству риса.BMC Microbiol 18:51. https://doi.org/10.1186/s12866-018-1174-z
CAS Статья PubMed PubMed Central Google ученый
Ядав А.Н., Верма П., Кумар В., Сангван П., Мишра С., Панджиар Н., Гупта В.К., Саксена А.К. (2018) Биоразнообразие рода Penicillium в различных местообитаниях. In: Gupta VK, Rodriguez-Couto S (eds) Новые и будущие разработки в микробной биотехнологии и биоинженерии, свойства и приложения Penicillium системы.Elsevier, Амстердам, Нидерланды, стр. 3–18
Google ученый
Zhang M, Yang C, Powell CA, Avery PB, Wang J, Huang Y, Duan Y (2019) Полевая оценка интегрированного управления для смягчения последствий цитрусовых huanglongbing во Флориде. Фронтальный завод Sci 9: 1890. https://doi.org/10.3389/fpls.2018.01890
Статья PubMed PubMed Central Google ученый
Биостимуляторы растений: определение, понятие, основные категории и правила
https: // doi.org / 10.1016 / j.scienta.2015.09.021Права и контентОсновные моменты
- •
На основе обзора литературы определены биостимуляторы растений.
- •
Биостимуляторы определяются их сельскохозяйственными / садоводческими функциями.
- •
Биостимуляторы повышают эффективность питания, устойчивость к абиотическим стрессам, качество урожая.
- •
Существует потребность в юридическом и согласованном определении биостимуляторов.
- •
Биостимуляторы способствуют созданию устойчивых, высокопроизводительных и низкозатратных сельскохозяйственных культур.
Реферат
Биостимулятор растений — это любое вещество или микроорганизм, применяемый к растениям с целью повышения эффективности питания, устойчивости к абиотическому стрессу и / или улучшения качества сельскохозяйственных культур, независимо от содержания в них питательных веществ. В более широком смысле, биостимуляторы растений также обозначают коммерческие продукты, содержащие смеси таких веществ и / или микроорганизмов.Определение, предложенное в этой статье, подкрепляется аргументами, относящимися к научным знаниям о природе, способах действия и типах воздействия биостимуляторов на сельскохозяйственные культуры и садовые растения. Кроме того, предлагаемое определение направлено на то, чтобы способствовать принятию биостимуляторов будущими нормативными актами, особенно в ЕС, проводя границы между биостимуляторами и удобрениями, пестицидами или агентами биоконтроля. Многие биостимуляторы улучшают питание, причем независимо от содержания в них питательных веществ.Биоудобрения, которые мы предлагаем в качестве подкатегории биостимуляторов, повышают эффективность использования питательных веществ и открывают новые пути усвоения питательных веществ растениями. В этом смысле микробные биостимуляторы включают микоризные и немикоризные грибы, бактериальные эндосимбионты (например, Rhizobium ) и ризобактерии, способствующие росту растений. Таким образом, микроорганизмы, примененные к растениям, могут выполнять двойную функцию: агента биоконтроля и биостимулятора, и заявленный сельскохозяйственный эффект будет способствовать их нормативной категоризации.В настоящем обзоре дается обзор определения и концепции биостимуляторов растений, а также их основных категорий. В этом документе также будет кратко описан правовой и нормативный статус биостимуляторов с акцентом на ЕС и США, а также описаны движущие силы, возможности и проблемы их рыночного развития.
Ключевые слова
Биостимулятор
Биоудобрение
Определение
Положение
Рекомендуемые статьиЦитирующие статьи (0)
Copyright © 2015 Автор.Опубликовано Elsevier B.V.
Рекомендуемые статьи
Цитирующие статьи
Применение биостимулятора на основе танинов влияет на структуру корня и улучшает устойчивость растений томата к засолению
% PDF-1.6 % 1 0 объект > эндобдж 2 0 obj > поток 2020-12-22T15: 32: 35 + 05: 30Springer2021-01-05T16: 27: 13 + 01: 002021-01-05T16: 27: 13 + 01: 00application / pdfhttps: //doi.org/10.1038/s41598- 020-79770-5
Как биостимуляторы могут улучшить здоровье и качество декоративных растений
Среди тепличных производителей растет интерес к использованию биостимуляторов для снижения химического воздействия без ущерба для качества урожая.Понимая, как различные активные ингредиенты биостимуляторов могут улучшить здоровье и качество растений, производители могут лучше всего решить, какую пользу биостимуляторы могут принести их деятельности.
Чем могут помочь биостимуляторы?
Наиболее распространенными активными ингредиентами биостимуляторов являются полезные микроорганизмы (грибы и бактерии). Эти микроорганизмы могут увеличить биодоступность основных макро- и микронутриентов, которые в противном случае были бы выщелочены из контейнера. Повышение биодоступности питательных веществ в среде улучшает общее состояние здоровья растений за счет улучшения усвоения питательных веществ и увеличения содержания питательных веществ в тканях.
Эти невидимые преимущества часто приводят к большему количеству визуальных эффектов, таких как более крупные растения с более зелеными листьями и более развитой корневой системой, а также готовые растения с большим количеством и / или более крупными цветками. Сроки производства могут быть сокращены из-за более быстрого роста и раннего цветения. Биостимуляторы также могут увеличивать рост побегов, корней, размер и количество цветков, стимулируя выработку растением гормонов, способствующих росту, таких как ауксины, цитокинины и гиббереллины. Некоторые бактерии также производят ауксины, которые могут усиливать рост корней у ассоциированных растений.
Арбускулярные микоризные грибы (микоризы) образуют мутуалистические ассоциации с корнями 90% наземных растений, произрастающих в почве, но эти ассоциации отсутствуют у выращиваемых в теплицах сельскохозяйственных культур. Сеть гиф грибов, производимая этими микоризами, эффективно увеличивает площадь поверхности корневой системы растения и позволяет им более эффективно поглощать воду и питательные вещества. Тогда растения смогут более эффективно использовать предоставленные питательные вещества. Когда микориза включается в смеси для выращивания на основе торфа, преимущества для подстилки растений включают более зеленые листья, более крупные побеги и больше цветов.
В приведенной выше таблице показаны преимущества биостимуляторов в декоративных растениях на разных этапах маркетинговой цепочки теплицы.
Снижение затрат, повышение качества урожая
При оценке эффектов применения биостимуляторов важно понимать условия выращивания, которые оптимизируют эффективность. Для многих биостимуляторов эта информация малоизвестна.
В целом, стимулирование роста от применения биостимуляторов будет менее очевидным, если растения уже растут при оптимальном уровне воды и плодородия.Фермеры могут воспользоваться способностью биостимулятора улучшать продуктивность растений в неоптимальных условиях, дополнив удобрения внесением биостимулятора.
Фермеры, выращивающие молодые растения, получат выгоду от применения биостимулятора во время размножения и пересадки за счет увеличения всхожести и силы саженцев и черенков. Эта повышенная энергия снижает шок трансплантата и может вызвать у молодых растений устойчивость к болезням. В целом, при правильном применении биостимуляторов производители могут ожидать сокращения потерь молодых растений.
Фермеры, выращивающие готовые растения, могут использовать биостимуляторы для выращивания растений с меньшим количеством удобрений, не жертвуя такими важными характеристиками, как количество цветков или размер растений. Растения, обработанные биостимуляторами, также могут быть более здоровыми и устойчивыми при выращивании с ограниченными ресурсами, что приводит к получению растений более высокого качества для розничной торговли и потребителей.
Внося эти изменения в методы выращивания, производители могут сократить количество синтетических химических удобрений, необходимых для получения высококачественных культур.
Простые способы введения биостимуляторов
Биостимуляторы можно легко включить в текущую производственную практику. Если вы покупаете среду в мешках, подумайте о продуктах, которые уже содержат биостимуляторы, такие как микориза. Биостимуляторы в гранулированной форме можно добавлять в индивидуальные смеси или при приготовлении собственных сред. Многие биостимуляторы также выпускаются в жидких формах, что позволяет выбрать биостимулятор, который наилучшим образом соответствует вашим производственным потребностям.
Поскольку активный ингредиент многих биостимуляторов является живым организмом (бактериями или грибами), важно убедиться, что эти продукты свежие и находятся в пределах их срока годности, и что они хранятся должным образом.Молодые растения можно поливать подходящим биостимулирующим средством, повышающим сопротивляемость растений на ранней стадии. Принимая во внимание время, метод и норму выпуска продукта, производители могут настроить программу биостимуляторов, соответствующую их текущим практикам.
Микробиологические исследования обнадеживают
Исследования с использованием полезных бактерий из коллекции Университета штата Огайо выявили два штамма бактерий Pseudomonas , которые улучшают здоровье и качество растений, выращиваемых в условиях с низким содержанием питательных веществ.Петуния, недотрога и анютины глазки выращивали на протяжении всего эксперимента только с 25 ppm N из 15-5-15 CaMg-удобрения, чтобы вызвать стресс с низким содержанием питательных веществ. Растения еженедельно обрабатывали средой, пропитанной разведенными культурами бактерий, аналогично применению коммерчески доступных биостимулирующих продуктов, и для сравнения использовали необработанный контроль.
Внесение полезных бактерий улучшило качество растений за счет увеличения размера растений и количества цветков в условиях низкого содержания питательных веществ Кроме того, внесение бактерий улучшило здоровье растений за счет увеличения содержания в листве N, P, K, Ca, Mg и S.
Микробные инокулянты являются обычным активным ингредиентом многих биостимуляторов. Бактерии, подобные этим штаммам Pseudomonas , колонизируют корни растений, формируя благоприятные отношения с растением, что повышает эффективность использования питательных веществ и ускоряет рост растений. Если растения удобряются оптимальным или супероптимальным уровнем питательных веществ, стимулирование роста этих полезных бактерий может не наблюдаться. Наши исследования показывают, что применение полезных бактерий может предоставить производителям решение для уменьшения количества удобрений без ущерба для качества урожая, что делает существующие тепличные технологии более экономичными и экологически устойчивыми.
Биостимуляторы обладают большим потенциалом в качестве устойчивого инструмента в тепличном производстве. Однако, как и в случае с любым новым продуктом, производители должны опробовать продукты перед их внедрением и иметь четкие ожидания относительно ожидаемых результатов. Не все биостимуляторы подойдут для каждой среды выращивания или для каждой тепличной культуры, и они всегда будут лучше работать как профилактический инструмент, а не как средство от существующих проблем. При правильном введении биостимуляторы позволяют производителям выращивать высококачественные растения, сокращая при этом другие химические вещества.
6 6 5 Как биостимуляторы могут улучшить здоровье и качество декоративных растенийНатан Нордштедт ([электронная почта защищена]) в настоящее время получает докторскую степень. по молекулярной биологии улучшения сельскохозяйственных культур в цветоводстве от Университета штата Огайо. Он является победителем стипендии Ричарда Т. Мейстера 2017 года. Посмотреть все рассказы авторов можно здесь.
Мишель Джонс — профессор и заведующая кафедрой цветоводства округа Колумбия Киплингера на факультете садоводства и растениеводства в Университете штата Огайо.Посмотреть все рассказы авторов можно здесь.
.